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苹果多酚HPLC测定方法及碱性磷酸酯酶在毕赤酵母中表达体系的建立

摘要(全文)第1-9页
第一部分 苹果果实中多酚化合物测定方法建立第9-63页
 目录第10-12页
 中英文对照第12-13页
 摘要(第一部分)第13-15页
 1. 引言第15-27页
  1.1 植物多酚概述第15-17页
  1.2 部分水果中主要多酚化合物第17-21页
  1.3 苹果中多酚物质的部分作用第21-23页
  1.4 酚类物质测定方法第23-25页
  1.5 课题提出的依据和研究意义第25-27页
 2. 材料与方法第27-31页
  2.1 材料第27页
  2.2 试剂第27页
  2.3 仪器第27页
  2.4 样品前处理第27-29页
  2.5 多酚提取第29-30页
  2.6 HPLC分析条件第30-31页
 3. 结果与分析第31-54页
  3.1 嘎拉和金冠主要多酚化合物HPLC吸收曲线特征第31-39页
   3.1.1 280nm最大吸收峰多酚化合物吸收曲线特征第31-33页
   3.1.2 320nm最大吸收峰多酚化合物吸收曲线特征第33-34页
   3.1.3 350nm最大吸收峰多酚化合物吸收曲线特征第34-35页
   3.1.4 515nm最大吸收峰多酚化合物吸收曲线特征第35-36页
   3.1.5 苹果多酚硫解和非硫解HPLC测定方法选择第36-38页
   3.1.6 金冠和嘎拉果实中主要多酚化合物分布第38-39页
  3.2 不同贮藏条件下嘎拉和金冠多酚化合物含量变化第39-51页
   3.2.1 280nm最大吸收峰多酚化合物含量变化第39-45页
    3.2.1.1 原花青素B2含量变化第39-40页
    3.2.1.2 黄烷醇类化合物含量变化第40-42页
    3.2.1.3 黄烷醇类化合物平均聚合度(DPn)变化第42页
    3.2.1.4 二氢查耳酮类化合物含量变化第42-45页
   3.2.2 320nm最大吸收峰多酚化合物含量变化第45-47页
    3.2.2.1 咖啡酰奎宁酸含量变化第45-46页
    3.2.2.2 邻香豆酰奎宁酸含量变化第46-47页
    3.2.2.3 羟基肉桂酸含量变化第47页
   3.2.3 350nm最大吸收峰多酚化合物含量变化第47-49页
    3.2.3.1 金冠和嘎拉果实中黄酮醇类化合物比较第47-48页
    3.2.3.2 金冠和嘎拉果实中黄酮醇类化合物含量比较第48-49页
   3.2.4 515nm最大吸收峰多酚化合物含量变化第49页
   3.2.5 嘎拉和金冠果实总酚含量变化第49-51页
  3.3 嘎拉和金冠果实多酚化合物含量比较第51-53页
   3.3.1 不同品种之间比较第51-52页
   3.3.2 不同组织之间比较第52-53页
  3.4 不同多酚化合物之间含量比例比较第53-54页
 4. 讨论第54-60页
  4.1 多酚的硫解和非硫解HPLC测定第54-55页
  4.2 单宁和植物多酚第55-57页
  4.3 多酚与苹果无公害生产第57页
  4.4 多酚与苹果品质第57-58页
  4.5 苹果多酚研究展望第58-60页
   4.5.1 多酚定量分析第58页
   4.5.2 苹果多酚遗传特性改良方面第58-59页
   4.5.3 多酚代谢方面第59页
   4.5.4 多酚作用方面第59-60页
 5. 结论第60-61页
 英文摘要(第一部分)第61-63页
第二部分 碱性磷酸酯酶在毕赤酵母中的表达方法建立第63-97页
 目录第64-65页
 缩写词第65-66页
 摘要(第二部分)第66-67页
 1. 引言第67-80页
 2. 材料与方法第80-85页
 3. 结果与分析第85-93页
  3.1 寡聚核甘酸引物第85页
  3.2 表达载体的构建第85-86页
  3.3 表达载体pPICZαA-hPLAP部分序列第86-88页
  3.4 刚性克隆的鉴定第88-89页
  3.5 电转化法和LiCl转化法第89页
  3.6 菌落PCR鉴定克隆的改进第89-90页
  3.7 多拷贝子的直接筛选第90页
  3.8 Mut~+和Mut~s型的确定第90-91页
  3.9 表达产物的酶活性测定第91-92页
  3.10 表达产物的SDS-PAGE电泳第92-93页
 4. 讨论第93-94页
 5. 结论第94-96页
 英文摘要(第二部分)第96-97页
图版Ⅰ-Ⅳ第97-98页
图版Ⅴ-Ⅷ第98-99页
英文摘要(全文)第99-101页
参考文献第101-116页
博士期间发表的主要论文第116-117页
致谢第117页

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