| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-17页 |
| 第一章 利巴韦林前体脂质体的制备工艺及含量测定 | 第17-30页 |
| 仪器与材料 | 第17-18页 |
| 方法与结果 | 第18-27页 |
| 一 利巴韦林前体脂质体制备工艺的优化 | 第18-21页 |
| 1．1 处方前利巴韦林理化性质的研究 | 第18-19页 |
| 1．2 单因素考察 | 第19-20页 |
| 1．3 利巴韦林前体脂质体的制备 | 第20-21页 |
| 二 前体脂质体中利巴韦林分析方法的建立 | 第21-24页 |
| 2．1 显色法测定利巴韦林前体脂质体中的药物含量 | 第21-24页 |
| 三 前体脂质体水化后包封率的测定 | 第24-27页 |
| 3．1 包封率的计算方法 | 第24页 |
| 3．2 样品的处理方法 | 第24-25页 |
| 3．3 再复水后脂质体中游离药物浓度的测定 | 第25-26页 |
| 3．4 前体脂质体的最终粒径对前体脂质体再水化的影响 | 第26-27页 |
| 3．5 不同强度水化条件对水化后脂质体包封率的影响 | 第27页 |
| 3．6 水化时间对脂质体包封率的影响 | 第27页 |
| 讨论 | 第27-30页 |
| 第二章 利巴韦林前体脂质体理化性质的研究 | 第30-44页 |
| 仪器与材料 | 第30-31页 |
| 方法与结果 | 第31-39页 |
| 一 利巴韦林前体脂质体乙醇残留量的测定 | 第31-33页 |
| 二 脂质体的粒子形态观察 | 第33-34页 |
| 2．1 光学显微镜下的脂质体形态观察 | 第33-34页 |
| 2．2 透射电镜下的脂质体形态观察 | 第34页 |
| 三 前体脂质体的扫描电镜观察 | 第34页 |
| 四 休止角的测定 | 第34-35页 |
| 五 粒径及粒度分布的测定 | 第35-37页 |
| 六 pH值的测定 | 第37页 |
| 七 Zeta电位的测定 | 第37页 |
| 八 体外释放的测定 | 第37-38页 |
| 九 前体脂质体再水化后脂质体流变学的考察 | 第38-39页 |
| 十 DSC曲线的绘制 | 第39页 |
| 十一 水化后脂质体表面张力的测定 | 第39页 |
| 讨论 | 第39-44页 |
| 第三章 利巴韦林前体脂质体稳定性的初步研究 | 第44-53页 |
| 仪器与材料 | 第44页 |
| 方法与结果 | 第44-52页 |
| 一 HPLC分析方法的建立 | 第44-47页 |
| 二 利巴韦林有关物质的测定 | 第47-49页 |
| 三 过氧化值的测定 | 第49页 |
| 四 影响因素实验 | 第49-50页 |
| 4．1 物理稳定性 | 第49-50页 |
| 4．2 化学稳定性 | 第50页 |
| 五 加速实验以及室温留样观察实验 | 第50-52页 |
| 讨论 | 第52-53页 |
| 第四章 利巴韦林前体脂质体的刺激性及急性毒性研究 | 第53-56页 |
| 仪器与材料 | 第53页 |
| 方法与结果 | 第53-55页 |
| 一 刺激性 | 第53页 |
| 二 鼻腔滞留实验 | 第53-54页 |
| 三 急性毒性实验 | 第54-55页 |
| 讨论 | 第55-56页 |
| 第五章 利巴韦林前体脂质体在大鼠体内的药物动力学及组织分布研究 | 第56-76页 |
| 仪器与材料 | 第56-57页 |
| 方法与结果 | 第57-71页 |
| 一 脂质体的制备 | 第57页 |
| 二 实验方案设计 | 第57页 |
| 三 利巴韦林体内分析方法的建立 | 第57-62页 |
| 3．1 生物样品中利巴韦林的测定 | 第57-58页 |
| 3．2 标准曲线的绘制 | 第58页 |
| 3．3 精密度的测定 | 第58-59页 |
| 3．4 回收率的测定 | 第59-61页 |
| 3．5 专属性的测定 | 第61-62页 |
| 四 药动学及组织分布实验结果处理 | 第62-71页 |
| 4．1 药物浓度及药物动力学参数 | 第62页 |
| 4．2 在不同脏器中及血清中利巴韦林的浓度-时间变化曲线 | 第62页 |
| 4．3 给药后不同时刻利巴韦林在不同组织中的分布情况 | 第62页 |
| 4．4 靶向性指数的计算 | 第62-65页 |
| 4．5 总靶向性指数的计算 | 第65页 |
| 4．6 相对生物利用度的计算 | 第65-71页 |
| 讨论 | 第71-76页 |
| 全文结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-85页 |
| 致谢 | 第85页 |
