中文摘要 | 第1-11页 |
英文摘要 | 第11-14页 |
第一章 文献综述 | 第14-45页 |
第一节 干扰素调节因子(IRF)功能及鱼类IRF研究进展 | 第14-38页 |
1 干扰素调节因子的结构特征及分类 | 第14-16页 |
2 干扰素调节因子在宿主免疫反应的作用 | 第16-32页 |
·IRFs在细胞模式识别受体信号通路中调节Ⅰ型干扰素产生 | 第17-20页 |
·IRF-1和IRF-2调节Ⅰ型干扰素的产生 | 第17页 |
·IRF-3和IRF-7调节Ⅰ型干扰素的产生 | 第17-19页 |
·IRF-5调节Ⅰ型干扰素的产生 | 第19页 |
·IRF-8调节Ⅰ型干扰素的产生 | 第19-20页 |
·IRFs在Toll样受体(TLR)信号通路中作用 | 第20-24页 |
·IRF-3和IRF-7在MyD88和TRIF依赖型信号通路中作用 | 第21-22页 |
·IRF-5在MyD88依赖型和TRIF依赖型信号通路中作用 | 第22-23页 |
·IRF-1在TLR信号通路中作用 | 第23页 |
·IRF-4和IRF-8在TLR信号通路中作用 | 第23-24页 |
·IRFs对免疫细胞发育的调控 | 第24-32页 |
·IRF-1、IRF-2、IRF-4、IRF-8调节DC细胞亚类的分化 | 第24-26页 |
·IRFs调节骨髓巨噬细胞和骨髓粒细胞的发育和分化 | 第26页 |
·IRF-1和IRF-2调节自然杀伤细胞发育 | 第26-27页 |
·IRF-4和IRF-8调节B细胞和浆细胞发育 | 第27-28页 |
·IRF调控T淋巴细胞的发育 | 第28-30页 |
·IRF调节Th1/Th2的分化 | 第30-32页 |
·IRF-6调节角质细胞的发育 | 第32页 |
3 干扰素调节因子抗肿瘤作用 | 第32-35页 |
·IRF-1功能的缺失或IRF-2过度表达都可能导致肿瘤发生 | 第33页 |
·IRF-3和1RF-7抗肿瘤作用 | 第33-34页 |
·IRF-4和IRF-8的抗肿瘤作用 | 第34页 |
·IRF-5的抗肿瘤作用 | 第34-35页 |
·IRF-9抗肿瘤作用 | 第35页 |
4 鱼类干扰素调节因子研究进展 | 第35-38页 |
·鱼类IRF-1的研究进展 | 第35-36页 |
·鱼类IRF-2的研究进展 | 第36-37页 |
·鱼类IRF-3的研究 | 第37页 |
·鱼类IRF-6的研究进展 | 第37页 |
·鱼类IRF-7的研究进展 | 第37-38页 |
第二节 CXC趋化因子及其受体研究概况 | 第38-45页 |
1 趋化因子及其受体特征 | 第38-39页 |
·趋化因子 | 第38页 |
·趋化因子受体 | 第38-39页 |
2 趋化因子及其受体生物学功能 | 第39-43页 |
·调节淋巴细胞的生成、游走和归巢 | 第39页 |
·调节抗原提呈与T、B细胞活化 | 第39-40页 |
·调节T细胞极化 | 第40-41页 |
·介导炎症反应 | 第41页 |
·促进血管生成 | 第41-42页 |
·对病毒感染的影响 | 第42页 |
·肿瘤生长与转移 | 第42页 |
·在中枢神经系统中作用 | 第42-43页 |
3 鱼类趋化因子受体研究进展 | 第43-45页 |
第二章 干扰素调节因子10基因的克隆、表达 | 第45-87页 |
1 前言 | 第45-46页 |
2 材料与方法 | 第46-65页 |
·试验材料 | 第46-48页 |
·主要仪器 | 第46-47页 |
·试剂盒与主要试剂 | 第47-48页 |
·载体和菌株 | 第48页 |
·试验鱼 | 第48页 |
·RNA的提取 | 第48-49页 |
·cDNA第一链的合成 | 第49-50页 |
·RACE-PCR克隆IRF-10 cDNA全长 | 第50-51页 |
·IRF-10基因全长cDNA的分析及系统进化树的构建 | 第51-52页 |
·IRF-10基因组DNA全长的克隆 | 第52-54页 |
·IRF-10启动子区域的获得 | 第54-56页 |
·草鱼不同组织IRF-10的表达 | 第56-57页 |
·RNA的提取 | 第56页 |
·RNA样品中DNA的处理 | 第56-57页 |
·cDNA模板的准备 | 第57页 |
·β-actin基因和IRF-10基因的扩增 | 第57页 |
·草鱼早期发育阶段IRF-10的表达 | 第57-60页 |
·cDNA模板的制备 | 第57-58页 |
·荧光定量PCR引物的检测 | 第58页 |
·质粒标准样品的制备 | 第58-59页 |
·稀释质粒 | 第59页 |
·荧光定量PCR检测 | 第59页 |
·数据分析 | 第59-60页 |
·实时荧光定量PCR检测IRF-10的诱导表达变化 | 第60页 |
·IRF-10原核表达 | 第60-64页 |
·原核表达载体的构建 | 第60-62页 |
·重组蛋白的诱导表达 | 第62页 |
·变性条件下纯化目的蛋白 | 第62-63页 |
·IRF-10蛋白兔多克隆抗体的制备 | 第63-64页 |
·Western blot检测IRF-10蛋白水平的表达 | 第64-65页 |
·组织蛋白的提取 | 第64-65页 |
·免疫印迹分析 | 第65页 |
3 结果 | 第65-82页 |
·IRF-10核酸序列及推导的氨基酸序列特征 | 第65页 |
·IRF-10的系统进化分析 | 第65-72页 |
·IRF-10的基因组结构和启动子分析 | 第72-75页 |
·IRF-10在健康草鱼组织转录水平的表达 | 第75-76页 |
·早期发育阶段IRF-10的表达 | 第76-78页 |
·实时荧光定量PCR检测gcIRF10的诱导变化 | 第78-80页 |
·IRF-10的原核表达 | 第80-82页 |
·免疫印迹 | 第82页 |
4 讨论 | 第82-87页 |
·IRF-10的分布 | 第82-83页 |
·IRF-10的结构 | 第83-85页 |
·IRF-10的表达 | 第85-87页 |
第三章 干扰素调节因子5基因的克隆与表达 | 第87-108页 |
1 前言 | 第87页 |
2 材料与方法 | 第87-89页 |
·试验材料 | 第87页 |
·cDNA第一链的合成 | 第87页 |
·RACE-PCR克隆IRF-5基因cDNA全长 | 第87-88页 |
·IRF-5基因全长cDNA的分析及系统进化树的构建 | 第88-89页 |
·基因组DNA全长的克隆 | 第89页 |
·IRF-5基因在草鱼不同组织mRNA水平上的表达 | 第89页 |
·草鱼早期发育阶段IRF-5转录水平的表达 | 第89页 |
·实时荧光定量PCR检测IRF-5的诱导表达变化 | 第89页 |
3 结果 | 第89-104页 |
·gcIRF5 cDNA全长及推导的氨基酸序列特征分析 | 第89-90页 |
·gcIRF5的系统进化分析 | 第90-98页 |
·IRF-5的基因组结构和启动子分析 | 第98-100页 |
·gcIRF5在健康草鱼组织转录水平的表达 | 第100-101页 |
·早期发育阶段IRF-5的表达 | 第101-102页 |
·实时荧光定量PCR检测gclRF5的诱导表达变化 | 第102-104页 |
4 讨论 | 第104-108页 |
·IRF-5结构及保守域 | 第104-106页 |
·IR5的表达 | 第106-108页 |
第四章 趋化因子受体CXCR5克隆以及表达研究 | 第108-130页 |
1 前言 | 第108-109页 |
2 材料与方法 | 第109-115页 |
·试验材料 | 第109页 |
·RNA的提取 | 第109-110页 |
·cDNA第一链的合成 | 第110-112页 |
·RACE-PCR克隆CXCR5基因全长cDNA | 第112-113页 |
·CXCR基因全长cDNA的分析及系统进化树的构建 | 第113页 |
·CXCR5基因组DNA全长的克隆 | 第113页 |
·健康草鱼不同组织CXCR5的表达 | 第113页 |
·草鱼早期发育阶段CXCR5转录水平的表达 | 第113-114页 |
·不同刺激物诱导草鱼后不同组织CXCR5的表达 | 第114-115页 |
3 结果 | 第115-128页 |
·CXCR5核酸序列及推断的氨基酸特征 | 第115-118页 |
·CXCR5的系统进化分析 | 第118-122页 |
·CXCR5的基因组结构 | 第122-123页 |
·早期发育阶段CXCR5的表达 | 第123-125页 |
·CXCR5在健康草鱼组织转录水平的表达 | 第125-126页 |
·实时荧光定量PCR检测CXCR5的诱导变化 | 第126-128页 |
4 讨论 | 第128-130页 |
·CXCR5结构特征 | 第128-129页 |
·CXCR5的表达 | 第129-130页 |
参考文献 | 第130-153页 |
附录 | 第153-154页 |
致谢 | 第154-156页 |