中文摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
英文缩写词表 | 第12-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-26页 |
·大豆异黄酮的研究现状 | 第13-16页 |
·大豆异黄酮 | 第13页 |
·异黄酮的植物生理功能 | 第13-14页 |
·异黄酮的人体保健功效 | 第14页 |
·大豆异黄酮的生物合成途径 | 第14-16页 |
·单核苷酸多态性(SNP) | 第16-18页 |
·单核苷酸多态性的研究进展 | 第16-17页 |
·SNP 作为遗传标记的优越性 | 第17-18页 |
·SNP 的检测技术 | 第18页 |
·EcoTILLING 技术及其应用 | 第18-21页 |
·EcoTILLING 技术的产生 | 第19-20页 |
·EcoTILLING 的技术路线及原理 | 第20页 |
·EcoTILLING 技术的不足 | 第20-21页 |
·高分辨率溶解曲线技术及其应用 | 第21-24页 |
·HRM 技术原理 | 第21页 |
·HRM 技术常用的荧光染料 | 第21-23页 |
·HRM 的应用概况 | 第23页 |
·Lightscanner 检测平台 | 第23-24页 |
·本研究的目的及依据 | 第24-26页 |
第二章 3000 份栽培大豆基因组 DNA 的提取 | 第26-32页 |
·材料 | 第26-27页 |
·大豆样品来源 | 第26页 |
·主要试剂 | 第26页 |
·酶及其它试剂 | 第26页 |
·主要仪器 | 第26-27页 |
·常用溶液配制 | 第27页 |
·方法 | 第27-29页 |
·叶片样本的获得 | 第27页 |
·基因组 DNA 提取步骤 | 第27-29页 |
·结果与分析 | 第29-31页 |
·基因组 DNA 的电泳检测 | 第30页 |
·基因组 DNA 浓度的测定 | 第30-31页 |
·三种提取基因组方法的比较 | 第31页 |
·小结 | 第31-32页 |
第三章 256 份栽培大豆异黄酮含量的测定 | 第32-38页 |
·材料 | 第32页 |
·大豆样品来源 | 第32页 |
·主要试剂 | 第32页 |
·主要仪器 | 第32页 |
·方法 | 第32-33页 |
·豆粉的制备 | 第32页 |
·异黄酮含量的测定 | 第32-33页 |
·结果与分析 | 第33-37页 |
·小结 | 第37-38页 |
第四章 大豆 HRM 检测体系的建立 | 第38-53页 |
·材料 | 第38-40页 |
·大豆样品来源 | 第38页 |
·菌种与载体 | 第38页 |
·主要试剂 | 第38页 |
·主要仪器 | 第38-39页 |
·常用溶液配制 | 第39-40页 |
·方法 | 第40-48页 |
·基因 IFS1 引物设计 | 第40-42页 |
·基因 IFS1 扩增产物特异性分析 | 第42-45页 |
·高分辨率熔解曲线检测(HRM) | 第45-48页 |
·结果与分析 | 第48-52页 |
·PCR 扩增 IFS1 基因 | 第48-49页 |
·HRM 分析结果 | 第49-51页 |
·测序结果 | 第51-52页 |
·小结 | 第52-53页 |
第五章 HRM 技术对大豆异黄酮合成关键酶基因的 SNP 分型 | 第53-69页 |
·材料 | 第53-54页 |
·大豆样品来源 | 第53页 |
·菌种与载体 | 第53页 |
·主要试剂 | 第53页 |
·主要仪器 | 第53-54页 |
·方法 | 第54-59页 |
·CHI2,CHS8,CHR,F_3H,4CL 基因 SNP 初步查找 | 第54-56页 |
·CHI2,CHS8,CHR,F_3H,4CL 基因 SNP 分型 | 第56-59页 |
·结果与分析 | 第59-68页 |
·CHI2,CHS8,CHR,F_3H,4CL 全长 SNP 的查找 | 第59-61页 |
·HRM 对检出的 SNP 分型结果 | 第61-68页 |
·小结 | 第68-69页 |
第六章 讨论 | 第69-73页 |
·大豆基因组 DNA 的提取 | 第69页 |
·HRM 检测体系的优化 | 第69-73页 |
·模板 DNA 对结果的影响 | 第70页 |
·引物设计 | 第70-71页 |
·PCR 条件的选择 | 第71页 |
·混合 POOL 倍数的选择 | 第71页 |
·不同碱基类型的检出效率 | 第71-73页 |
结论 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-78页 |
作者简介及科研成果 | 第78-79页 |
致谢 | 第79页 |