| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-18页 |
| 研究现状、成果 | 第12-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 一、Nocth1分子在各病理级别胶质瘤、各分子亚型GBM的表达特征 | 第18-46页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-35页 |
| 1.1.1 病例资料和实验对象 | 第18-19页 |
| 1.1.2 实验所用胶质瘤细胞系来源 | 第19页 |
| 1.1.3 主要仪器与实验试剂 | 第19-21页 |
| 1.1.4 主要试剂配置 | 第21-22页 |
| 1.1.5 实验方法 | 第22-35页 |
| 1.2 结果 | 第35-41页 |
| 1.2.1 MERAV数据库分析Notch1在不同组织中的表达 | 第35页 |
| 1.2.2 各数据库分析Notch1在GBM中的表达 | 第35-36页 |
| 1.2.3 Notch1在胶质瘤病理级别和组织类型中的表达 | 第36-39页 |
| 1.2.4 Notch1在GBM各分子亚型中的表达及预后 | 第39-40页 |
| 1.2.5 Notch1在肿瘤细胞系中的表达 | 第40页 |
| 1.2.6 Notch1的表达与肿瘤干性相关 | 第40-41页 |
| 1.3 讨论 | 第41-45页 |
| 1.4 小结 | 第45-46页 |
| 二、Notch1信号通路通过调节NF-κB(p65)分子调控胶质瘤细胞增殖与凋亡的生物学过程 | 第46-79页 |
| 2.1 对象和方法 | 第46-56页 |
| 2.1.1 病例资料和实验对象 | 第46页 |
| 2.1.2 实验所用胶质瘤细胞系来源及实验动物 | 第46-47页 |
| 2.1.3 主要仪器与实验试剂 | 第47-49页 |
| 2.1.4 主要试剂配置 | 第49页 |
| 2.1.5 实验方法 | 第49-56页 |
| 2.2 结果 | 第56-77页 |
| 2.2.1 生物信息学分析Notch通路与NF-κB(p65)分子在GBM中的相关性。 | 第56-63页 |
| 2.2.2 Notch1抑制剂DAPT抑制胶质瘤细胞增殖与增加胶质瘤细胞凋亡 | 第63-65页 |
| 2.2.3 Notch1抑制剂DAPT能够下调NF-κB(p65)的表达 | 第65-67页 |
| 2.2.4 筛选出合适能够敲低Notch1分子的慢病毒序列 | 第67-68页 |
| 2.2.5 敲低Notch1能够抑制胶质瘤细胞增殖与增加胶质瘤细胞凋亡 | 第68-70页 |
| 2.2.6 敲低Notch1能够下调NF-κB(p65)的表达 | 第70-73页 |
| 2.2.7 Notch1通路调控NF-κB(p65)分子的具体机制 | 第73-74页 |
| 2.2.8 敲低Notch1通路调控胶质瘤生长的体内实验 | 第74-77页 |
| 2.3 讨论 | 第77-79页 |
| 2.4 小结 | 第79页 |
| 全文结论 | 第79-80页 |
| 论文创新点 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-91页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第91-94页 |
| 附录 | 第94-95页 |
| 综述 胶质瘤干细胞血管周及免疫微环境的研究进展 | 第95-117页 |
| 综述参考文献 | 第105-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
| 个人简历 | 第118页 |
