| 中文摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-35页 |
| 1.前言 | 第16-17页 |
| 2.黄颡鱼的特性 | 第17-19页 |
| 2.1 生物学特性 | 第17-18页 |
| 2.2 营养需求 | 第18-19页 |
| 3.蛋白酶解技术 | 第19-29页 |
| 3.1 蛋白酶解技术的优势 | 第19-20页 |
| 3.2 内源酶自溶技术 | 第20-23页 |
| 3.3 外源酶酶解技术 | 第23-26页 |
| 3.4 蛋白酶解工艺 | 第26-29页 |
| 4.酶解物营养特点与鱼体代谢 | 第29-31页 |
| 4.1 游离氨基酸 | 第29-30页 |
| 4.2 小肽 | 第30-31页 |
| 5.酶解鱼浆、鱼溶浆与水产养殖 | 第31-34页 |
| 5.1 酶解鱼浆、鱼溶浆的研究现状 | 第31-34页 |
| 5.2 肽的分子量对养殖鱼类生长的影响 | 第34页 |
| 6.研究内容 | 第34-35页 |
| 第二章 鳀鱼鱼浆自溶过程中营养成分的变化 | 第35-47页 |
| 1.前言 | 第35页 |
| 2.材料和方法 | 第35-38页 |
| 2.1 试验原料和试剂 | 第35-36页 |
| 2.2 试验设计 | 第36页 |
| 2.3 自溶鱼浆的制备 | 第36页 |
| 2.4 理化分析 | 第36-38页 |
| 3.试验结果 | 第38-45页 |
| 3.1 鳀鱼主要成分 | 第38页 |
| 3.2 自溶时间的选择 | 第38-40页 |
| 3.3 鳀鱼自溶过程中营养成分的变化 | 第40-44页 |
| 3.4 自溶鱼浆与商业鱼粉的比较 | 第44-45页 |
| 4.讨论 | 第45-46页 |
| 5.小结 | 第46-47页 |
| 第三章 鳀鱼自溶鱼浆对黄颡鱼生长、健康的影响 | 第47-63页 |
| 1.前言 | 第47-48页 |
| 2.材料与方法 | 第48-53页 |
| 2.1 试验原料 | 第48页 |
| 2.2 试验日粮的制备 | 第48-50页 |
| 2.3 试验鱼与养殖管理 | 第50-51页 |
| 2.4 样品采集 | 第51-52页 |
| 2.5 理化分析 | 第52-53页 |
| 2.6 数据统计与分析 | 第53页 |
| 3.结果 | 第53-60页 |
| 3.1 生长及日粮利用的变化 | 第53-54页 |
| 3.2 体成分的变化 | 第54-56页 |
| 3.3 血清理化指标的变化 | 第56-57页 |
| 3.4 组织结构的观察 | 第57-58页 |
| 3.5 体色和色素含量的变化 | 第58-60页 |
| 4.讨论 | 第60-62页 |
| 5.小结 | 第62-63页 |
| 第四章 金枪鱼酶解鱼溶浆对黄颡鱼生长、健康的影响 | 第63-82页 |
| 1.前言 | 第63页 |
| 2.材料与方法 | 第63-71页 |
| 2.1 试验原料 | 第63-65页 |
| 2.2 试验日粮的制备 | 第65-68页 |
| 2.3 试验鱼与养殖管理 | 第68-69页 |
| 2.4 样品采集 | 第69-70页 |
| 2.5 样品分析 | 第70-71页 |
| 2.6 计算与分析 | 第71页 |
| 3.结果 | 第71-78页 |
| 3.1 生长及日粮利用的变化 | 第71-73页 |
| 3.2 部分氨基酸与SGR的pearson相关性分析 | 第73-74页 |
| 3.3 体成分的变化 | 第74页 |
| 3.4 血清生理指标的变化 | 第74-76页 |
| 3.5 组织结构的观察 | 第76-77页 |
| 3.6 体色和色素含量的变化 | 第77-78页 |
| 4.讨论 | 第78-81页 |
| 5.小论 | 第81-82页 |
| 第五章 鱼溶浆酶解程度对黄颡鱼生长、健康的影响 | 第82-99页 |
| 1.前言 | 第82页 |
| 2 材料与方法 | 第82-89页 |
| 2.1 试验原料 | 第82-83页 |
| 2.2 试验日粮的制备 | 第83-87页 |
| 2.3 试验鱼与养殖管理 | 第87-88页 |
| 2.4 样品采集 | 第88页 |
| 2.5 样品分析 | 第88-89页 |
| 2.6 计算与分析 | 第89页 |
| 3 结果 | 第89-95页 |
| 3.1 生长及日粮利用的变化 | 第89-91页 |
| 3.2 部分氨基酸与SGR的pearson相关性分析 | 第91页 |
| 3.3 体成分的变化 | 第91-93页 |
| 3.4 血清生理指标的变化 | 第93页 |
| 3.5 组织结构的观察 | 第93-94页 |
| 3.6 体色和色素含量的变化 | 第94-95页 |
| 4 讨论 | 第95-98页 |
| 5.小结 | 第98-99页 |
| 第六章 黄颡鱼肠道中PEPT1对蛋白质的吸收调控作用 | 第99-108页 |
| 1.前言 | 第99-100页 |
| 2 材料与方法 | 第100-102页 |
| 2.1 试验日粮的制备 | 第100页 |
| 2.2 试验鱼与养殖管理 | 第100页 |
| 2.3 样品采集 | 第100页 |
| 2.4 PepT1基因核心片段的克隆 | 第100-101页 |
| 2.5 荧光实时定量PCR(RT-PCR) | 第101-102页 |
| 3.结果 | 第102-106页 |
| 3.1 血清游离氨基酸的变化 | 第102-105页 |
| 3.2 肠道中PepT1基因的表达差异 | 第105-106页 |
| 4.讨论 | 第106-107页 |
| 5.小结 | 第107-108页 |
| 第七章 全文总结 | 第108-110页 |
| 参考文献 | 第110-130页 |
| 发表的学术论文 | 第130-131页 |
| 致谢 | 第131-132页 |
