| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 主要符号表 | 第16-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-35页 |
| 1.1 荧光探针结构功能调控意义 | 第17页 |
| 1.2 荧光探针结构功能调控 | 第17-22页 |
| 1.2.1 荧光探针的性能参数 | 第17-19页 |
| 1.2.2 荧光探针的构建原理 | 第19页 |
| 1.2.3 荧光探针的识别原理 | 第19-22页 |
| 1.3 论文选题的研究背景 | 第22-33页 |
| 1.3.1 GSH荧光探针构建的研究背景 | 第22-30页 |
| 1.3.2 线粒体膜电位荧光探针设计的研究背景 | 第30-33页 |
| 1.4 论文选题总结及论文设计 | 第33-35页 |
| 第二章 凝血酶介导的比例型双光子荧光探针对血小板中内源性谷胱甘肽的超痕量比例成像 | 第35-55页 |
| 2.1 概述 | 第35页 |
| 2.2 荧光探针的设计 | 第35-36页 |
| 2.3 荧光探针IQDC-L及中间产物的合成路线 | 第36-37页 |
| 2.4 实验部分 | 第37-41页 |
| 2.4.1 试剂与仪器 | 第37页 |
| 2.4.2 IQDC-L和中间体的合成方法 | 第37-39页 |
| 2.4.3 光谱测定 | 第39页 |
| 2.4.4 荧光量子产量测量 | 第39页 |
| 2.4.5 光稳定性测试 | 第39页 |
| 2.4.6 量子理论计算 | 第39-40页 |
| 2.4.7 血细胞准备及其成像 | 第40页 |
| 2.4.8 单/双光子荧光成像 | 第40页 |
| 2.4.9 双光子吸收截面测定 | 第40页 |
| 2.4.10 流式细胞术 | 第40-41页 |
| 2.5 结果和讨论 | 第41-53页 |
| 2.5.1 探针分子IQDC-L及其中间产物的光谱性质 | 第41-42页 |
| 2.5.2 探针分子IQDC-L识别GSH的光谱 | 第42页 |
| 2.5.3 量子理论计算 | 第42-43页 |
| 2.5.4 探针分子IQDC-L比例荧光机制作用机理 | 第43-44页 |
| 2.5.5 IQDC-L与GSH的核磁滴定 | 第44-45页 |
| 2.5.6 探针分子对GSH的特异选择性 | 第45页 |
| 2.5.7 氨基酸对IQDC-L干扰性测试 | 第45-46页 |
| 2.5.8 探针分子IQDC-L的双光子性能 | 第46-47页 |
| 2.5.9 IQCD-L分子的水溶性 | 第47页 |
| 2.5.10 IQCD-L分子的光稳定性 | 第47-48页 |
| 2.5.11 p H值影响测定 | 第48页 |
| 2.5.12 外周血液中PLT内GSH变化的比例成像 | 第48-49页 |
| 2.5.13 流式细胞术中IQDC-L分子对外周血中PLT的高选择性筛选 | 第49-52页 |
| 2.5.14 IQDC-L分子对组织深度成像 | 第52-53页 |
| 2.6 结论 | 第53-55页 |
| 第三章 检测癌细胞线粒体中谷胱甘肽痕量变化的超灵敏荧光比例成像探针 | 第55-73页 |
| 3.1 概述 | 第55页 |
| 3.2 荧光探针的设计 | 第55-56页 |
| 3.3 荧光探针的合成路线 | 第56-57页 |
| 3.4 实验部分 | 第57-61页 |
| 3.4.1 试剂与仪器 | 第57页 |
| 3.4.2 IQDC-M和中间体的合成方法 | 第57-59页 |
| 3.4.3 探针分子光谱测定 | 第59页 |
| 3.4.4 荧光量子产量测量 | 第59页 |
| 3.4.5 量子计算 | 第59页 |
| 3.4.6 细胞培养和孵育 | 第59页 |
| 3.4.7 共聚焦显微成像 | 第59-60页 |
| 3.4.8 细胞共定位成像 | 第60页 |
| 3.4.9 流式细胞术和FITC-膜联蛋白V/PI方法 | 第60页 |
| 3.4.10 线粒体膜电位分析 | 第60-61页 |
| 3.4.11 谷胱甘肽测定 | 第61页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第61-72页 |
| 3.5.1 荧光探针IQDC-M及中间产物的光谱性质 | 第61-62页 |
| 3.5.2 IQDC-M对GSH变化的特异性选择 | 第62-63页 |
| 3.5.3 荧光探针IQDC-M的设计机理 | 第63页 |
| 3.5.4 荧光探针分子IQDC-M对GSH超痕量改变的荧光识别机理 | 第63-65页 |
| 3.5.6 核磁滴定 | 第65-66页 |
| 3.5.7 IQDC-M与GSH的反应机制模拟 | 第66-67页 |
| 3.5.8 理论量子计算 | 第67页 |
| 3.5.9 干扰性测试 | 第67-68页 |
| 3.5.10 IQDC-M分子的的水/油两亲性 | 第68页 |
| 3.5.11 癌细胞线粒体内GSH超痕量变化的荧光识别 | 第68-70页 |
| 3.5.12 IQDC-M检测正常细胞和癌细胞中GSH的能力 | 第70-71页 |
| 3.5.13 细胞共定位成像实验 | 第71页 |
| 3.5.14 通过IQDC-M监测活癌细胞凋亡中的GSH超痕量的变化 | 第71-72页 |
| 3.6 本章小结 | 第72-73页 |
| 第四章 高灵敏荧光分子开关对线粒体膜电位微量变化的比例监测 | 第73-91页 |
| 4.1 概述 | 第73-74页 |
| 4.2 染料分子设计 | 第74页 |
| 4.3 实验部分 | 第74-77页 |
| 4.3.1 化学试剂和仪器 | 第74-75页 |
| 4.3.2 探针分子TPP-SP和中间产物的合成 | 第75页 |
| 4.3.3 探针分子光谱测定 | 第75-76页 |
| 4.3.4 荧光量子产量测量 | 第76页 |
| 4.3.5 p H对探针分子的影响 | 第76页 |
| 4.3.6 量子理论计算 | 第76页 |
| 4.3.7 探针和Mito Tracker?Red CMXRos的光稳定性 | 第76-77页 |
| 4.3.8 细胞培养 | 第77页 |
| 4.3.9 细胞毒性 | 第77页 |
| 4.3.10 共聚焦显微镜成像 | 第77页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第77-89页 |
| 4.4.1 荧光探针TPP-SP的设计策略 | 第77-78页 |
| 4.4.2 探针的光谱性能 | 第78-80页 |
| 4.4.3 荧光探针分子对SDS的响应时间测试 | 第80页 |
| 4.4.4 理论量子计算 | 第80-81页 |
| 4.4.5 光稳定性测试 | 第81-82页 |
| 4.4.6 p H影响 | 第82页 |
| 4.4.7 特异选择性测定 | 第82-83页 |
| 4.4.8 离子干扰性测定 | 第83-84页 |
| 4.4.9 氨基酸干扰性测定 | 第84页 |
| 4.4.10 细胞毒性测试 | 第84-85页 |
| 4.4.11 染料浓度的选择 | 第85页 |
| 4.4.12 共定位成像 | 第85-86页 |
| 4.4.13 探针识别MMP细胞活化细胞的荧光变化 | 第86-88页 |
| 4.4.14 动态监测细胞凋亡过程中MMP和线粒体形态的微量变化 | 第88-89页 |
| 4.5 本章小结 | 第89-91页 |
| 第五章 论文总结与展望 | 第91-93页 |
| 5.1 论文总结 | 第91-92页 |
| 5.2 展望 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-100页 |
| 附录 | 第100-107页 |
| 致谢 | 第107-109页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第109-110页 |
