| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 第一章 BSMP的制备及表征 | 第12-23页 |
| 1.1 仪器、试药 | 第12页 |
| 1.2 BSMP的制备及粒度测定 | 第12-15页 |
| 1.3 BSMP的表面形貌表征 | 第15-17页 |
| 1.4 BSMP的比表面积测定 | 第17-18页 |
| 1.5 BSMP堆密度测定 | 第18-20页 |
| 1.6 BSMP的红外光谱分析 | 第20-21页 |
| 1.7 小结 | 第21-23页 |
| 第二章 BSMP粉体学特征对其止血作用的影响 | 第23-35页 |
| 2.1 仪器、试药与动物 | 第23-24页 |
| 2.2 BSMP对大鼠断尾止血作用评价 | 第24-26页 |
| 2.3 BSMP体外吸附血液能力测定 | 第26-27页 |
| 2.4 BSMP血凝块SEM下形貌表征 | 第27-28页 |
| 2.5 BSMP血凝块内部结构表征 | 第28-30页 |
| 2.6 BSMP血凝块的物性分析 | 第30-33页 |
| 2.7 大鼠大腿肌肉创伤止血实验 | 第33-34页 |
| 2.8 小结 | 第34-35页 |
| 第三章 冻干白及超微粉的制备及表征 | 第35-44页 |
| 3.1 仪器与试药 | 第35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.2.1 冻干鲜白及的制备 | 第35-36页 |
| 3.2.2 冻干鲜白及与普通干品白及横切面形貌特征对比 | 第36页 |
| 3.2.3 冻干白及超微粉的制备及粒径分析 | 第36页 |
| 3.2.4 超微粉堆密度测定和比表面积测定 | 第36页 |
| 3.2.5 表面结构表征 | 第36页 |
| 3.2.6 冻干白及超微粉与BSMP(＜75)醇提物HPLC图谱比较 | 第36-37页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第37-43页 |
| 3.3.1 冻干白及与普通干品白及横切面形貌特征的对比 | 第37-38页 |
| 3.3.2 冻干白及超微粉与BSMP(＜75)粒径分布的对比 | 第38-39页 |
| 3.3.3 冻干白及超微粉与BSMP(＜75)堆密度的对比 | 第39页 |
| 3.3.4 冻干白及超微粉与BSMP(＜75)比表面积的对比 | 第39-40页 |
| 3.3.5 冻干白及超微粉与BSMP(＜75)粉体形貌特征对比 | 第40-41页 |
| 3.3.6 冻干白及超微粉与BSMP(＜75)的醇提物HPLC图谱比较 | 第41-43页 |
| 3.4 小结 | 第43-44页 |
| 第四章 冻干白及超微粉促创面愈合作用研究 | 第44-54页 |
| 4.1 仪器、试药与动物 | 第44-45页 |
| 4.1.1 仪器 | 第44-45页 |
| 4.1.2 试药 | 第45页 |
| 4.1.3 动物 | 第45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-48页 |
| 4.2.1 兔耳创伤模型建立 | 第45-46页 |
| 4.2.2 创面愈合过程的记录 | 第46页 |
| 4.2.3 皮肤组织的采集 | 第46页 |
| 4.2.4 皮肤组织的包埋和制片 | 第46-47页 |
| 4.2.5 组织病理学检查 | 第47页 |
| 4.2.6 免疫组织化学法检测CD31蛋白的表达 | 第47页 |
| 4.2.7 RT-PCR检测兔耳组织中VEGFmRNA的表达 | 第47-48页 |
| 4.2.8 统计学处理 | 第48页 |
| 4.3 结果 | 第48-52页 |
| 4.3.1 创面愈合率 | 第48-49页 |
| 4.3.2 病理组织学观察 | 第49-50页 |
| 4.3.3 免疫组化法染色观察兔耳组织中CD31蛋白的定位表达 | 第50-52页 |
| 4.3.4 创面组织中VEGFmRNA的表达 | 第52页 |
| 4.4 小结 | 第52-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 展望 | 第55-56页 |
| 文献综述 | 第56-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第76-77页 |
