| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 0 前言 | 第12-21页 |
| 0.1 琼胶的概述 | 第12-14页 |
| 0.1.1 琼胶的来源 | 第12-13页 |
| 0.1.2 琼胶的化学组成和结构 | 第13页 |
| 0.1.3 琼胶的理化性质 | 第13页 |
| 0.1.4 琼胶的应用 | 第13-14页 |
| 0.2 琼脂糖的概述 | 第14-17页 |
| 0.2.1 琼脂糖的结构 | 第14页 |
| 0.2.2 琼脂糖的制备 | 第14-16页 |
| 0.2.3 琼脂糖的应用 | 第16-17页 |
| 0.3 芳基硫酸酯酶的概述 | 第17-19页 |
| 0.3.1 芳基硫酸酯酶简介 | 第17-18页 |
| 0.3.2 芳基硫酸酯酶的研究进展 | 第18-19页 |
| 0.4 研究目的及内容 | 第19-21页 |
| 0.4.1 研究目的及意义 | 第19页 |
| 0.4.2 研究内容 | 第19-21页 |
| 1 芳基硫酸酯酶产生菌的筛选及鉴定 | 第21-34页 |
| 1.1 引言 | 第21页 |
| 1.2 实验材料 | 第21-23页 |
| 1.2.1 实验药品 | 第21-22页 |
| 1.2.2 实验仪器 | 第22-23页 |
| 1.3 实验方法 | 第23-28页 |
| 1.3.1 菌体筛选 | 第23-24页 |
| 1.3.2 菌种的性质分析及鉴定 | 第24-28页 |
| 1.4 实验结果与讨论 | 第28-33页 |
| 1.4.1 初筛结果 | 第28页 |
| 1.4.2 对硝基苯酚标准曲线 | 第28-29页 |
| 1.4.3 复筛结果 | 第29页 |
| 1.4.4 产酶方式的确定 | 第29-30页 |
| 1.4.5 菌种形态特征 | 第30页 |
| 1.4.6 菌种生理生化鉴定 | 第30-31页 |
| 1.4.7 菌株 K2的 16S rDNA序列测定结果 | 第31-32页 |
| 1.4.8 菌株的进化树构建 | 第32-33页 |
| 1.5 本章小结 | 第33-34页 |
| 2 细菌 Marinomonas sp. FW-1 发酵产酶条件的优化 | 第34-58页 |
| 2.1 引言 | 第34页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第34-36页 |
| 2.2.1 菌种 | 第34页 |
| 2.2.2 实验药品 | 第34-35页 |
| 2.2.3 主要实验仪器 | 第35-36页 |
| 2.3 实验方法 | 第36-39页 |
| 2.3.1 菌株 FW-1 生长曲线 | 第36页 |
| 2.3.2 菌株 FW-1 产酶曲线 | 第36页 |
| 2.3.3 单因素-响应面法对培养基成分的优化 | 第36-38页 |
| 2.3.4 单因素法对培养条件的优化 | 第38-39页 |
| 2.4 实验结果 | 第39-56页 |
| 2.4.1 菌株 FW-1 生长曲线 | 第39-40页 |
| 2.4.2 菌株 FW-1 产酶曲线 | 第40页 |
| 2.4.3 单因素-响应面法对培养基成分的优化 | 第40-54页 |
| 2.4.4 单因素法对培养条件的优化 | 第54-56页 |
| 2.5 本章小结 | 第56-58页 |
| 3 芳基硫酸酯酶的粗分离、酶学性质研究及酶的应用 | 第58-72页 |
| 3.1 引言 | 第58页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第58-61页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第58-59页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第59页 |
| 3.2.3 试剂的配置 | 第59-61页 |
| 3.3 实验方法 | 第61-64页 |
| 3.3.1 芳基硫酸酯酶的分离纯化 | 第61-62页 |
| 3.3.2 芳基硫酸酯酶的酶学性质 | 第62-63页 |
| 3.3.3 酶应用于琼胶的脱硫酸根效果 | 第63-64页 |
| 3.4 实验结果 | 第64-70页 |
| 3.4.1 芳基硫酸酯酶的粗分离 | 第64-66页 |
| 3.4.2 芳基硫酸酯酶酶学性质 | 第66-70页 |
| 3.4.3 酶应用于琼胶的脱硫酸根效果 | 第70页 |
| 3.5 本章小结 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-79页 |
| 总结 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 个人简历 | 第82页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第82-83页 |