| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-25页 |
| 1.1 引言 | 第12页 |
| 1.2 肺癌基础研究概况 | 第12-17页 |
| 1.2.1 肺癌的流行病学概况 | 第12-13页 |
| 1.2.2 临床诊断与治疗 | 第13-14页 |
| 1.2.3 癌细胞的黏附、转移与耐药性 | 第14-17页 |
| 1.3 海洋生物资源在抗肿瘤药物开发中的应用 | 第17-20页 |
| 1.3.1 海洋微生物资源的多样性 | 第17-18页 |
| 1.3.2 海洋天然产物的及研究进展 | 第18-20页 |
| 1.4 多糖在抗肿瘤研究中的应用 | 第20-24页 |
| 1.4.1 多糖抗肿瘤的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.4.2 海洋生物多糖的研究进展 | 第22-24页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第24-25页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第25-42页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-28页 |
| 2.1.1 实验生物 | 第25页 |
| 2.1.2 培养基 | 第25页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第25-27页 |
| 2.1.4 实验设备 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-42页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第28页 |
| 2.2.2 活性菌株的筛选 | 第28页 |
| 2.2.3 目的菌株的鉴定 | 第28-29页 |
| 2.2.4 发酵条件的优化 | 第29页 |
| 2.2.5 EPS11的分离纯化 | 第29-30页 |
| 2.2.6 EPS11理化性质的确定 | 第30-31页 |
| 2.2.7 EPS11对不同细胞生长的抑制 | 第31-32页 |
| 2.2.8 EPS11对细胞形态及黏附的影响 | 第32-34页 |
| 2.2.9 EPS11诱导A549细胞发生凋亡 | 第34-35页 |
| 2.2.10 EPS11对βⅢ-tubulin基因转录的影响 | 第35-37页 |
| 2.2.11 EPS11对βⅢ-Tubulin蛋白表达的影响 | 第37-39页 |
| 2.2.12 EPS11对小鼠体内移植瘤的作用 | 第39-42页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第42-66页 |
| 3.1 菌株的筛选与鉴定 | 第42-44页 |
| 3.2 活性物质的发酵优化及性质确定 | 第44-46页 |
| 3.2.1 发酵条件的优化 | 第44-45页 |
| 3.2.2 活性物质类型的确定 | 第45-46页 |
| 3.3 活性物质的分离纯化 | 第46-47页 |
| 3.4 EPS11的性质及结构鉴定 | 第47-51页 |
| 3.4.1 EPS11中小分子杂质的确定 | 第47-48页 |
| 3.4.2 EPS11中活性成分性质的确定 | 第48-50页 |
| 3.4.3 EPS11的红外光谱 | 第50页 |
| 3.4.4 EPS11的重均分子量 | 第50-51页 |
| 3.4.5 EPS11的单糖组成 | 第51页 |
| 3.5 EPS11对癌细胞的抑制作用 | 第51-52页 |
| 3.6 EPS11对细胞行为的影响 | 第52-55页 |
| 3.6.1 EPS11破坏癌细胞的黏附 | 第52-54页 |
| 3.6.2 EPS11抑制黏附相关蛋白的表达 | 第54-55页 |
| 3.7 EPS11对细胞结构及运动能力的影响 | 第55-57页 |
| 3.7.1 EPS11破坏癌细胞表面结构 | 第55-56页 |
| 3.7.2 EPS11抑制A549细胞的迁移能力 | 第56-57页 |
| 3.8 EPS11诱导细胞凋亡 | 第57-59页 |
| 3.9 EPS11抑制A549细胞中βⅢ-Tubulin通路的活化 | 第59-61页 |
| 3.10 EPS11抑制小鼠体内A549移植瘤 | 第61-63页 |
| 3.11 小结与讨论 | 第63-66页 |
| 第四章 结论与展望 | 第66-68页 |
| 4.1 结论 | 第66页 |
| 4.2 不足与展望 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-78页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第78-79页 |
| 作者简历 | 第78页 |
| 已发表(或正式接收)的学术论文 | 第78页 |
| 参与的研究项目 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
