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海带低硫酸化杂多糖(UF)的指纹图谱及药代动力学初步研究

摘要第4-5页
ABSTRACT第5-6页
第一章 绪论第10-22页
    1 研究背景第10页
    2 中药及其制剂中多糖的质量控制方法第10-15页
        2.1 总糖含量检测方法第10-12页
        2.2 分子量大小及其分布测定第12页
        2.3 单糖组成及含量测定第12-15页
    3 多糖的神经保护活性机制第15-18页
        3.1 抗氧化活性与Nrf2/HO-1信号通路第15-16页
        3.2 MAPK信号通路第16页
        3.3 促进神经细胞突起生长第16页
        3.4 神经营养作用:提高神经细胞的存活率第16-17页
        3.5 NF-κB家族第17页
        3.6 PI3K/Akt信号通路第17页
        3.7 其他神经营养通路的激活第17-18页
    4 多糖的药代动力学研究方法第18-20页
        4.1 色谱法第18页
        4.2 荧光标记法第18-19页
        4.3 放射性同位素标记法第19-20页
        4.4 生物测定法第20页
    5 选题意义与研究内容第20-22页
第二章 海带低硫酸化杂多糖(UF)水解单糖高效液相色谱指纹图谱研究第22-42页
    1 材料和仪器第22-23页
        1.1 实验材料第22页
        1.2 实验仪器第22-23页
    2 实验方法第23-26页
        2.1 样品制备第23页
        2.2 理化性质分析第23-24页
        2.3 指纹图谱分析第24-26页
        2.4 数据分析第26页
    3 结果与讨论第26-41页
        3.1 理化性质分析第26页
        3.2 水解及衍生化条件优化第26-29页
        3.3 方法学考察第29-36页
        3.4 指纹图谱的建立与分析第36-41页
    4 结论与展望第41-42页
第三章 海带低硫酸化杂多糖(UF)的微量分析方法研究第42-55页
    1 材料和仪器第42-43页
        1.1 实验材料第42页
        1.2 实验仪器第42-43页
    2 实验方法第43-46页
        2.1 荧光标记UF样品的制备第43页
        2.2 FITC-UF中FITC取代度的测定第43-44页
        2.3 FITC-UF的光谱学特性第44页
        2.4 FITC-UF细胞毒性试验第44-45页
        2.5 方法学考察第45页
        2.6 数据分析第45-46页
    3 结果与讨论第46-54页
        3.1 FITC-UF中FITC取代度的测定第46-47页
        3.2 FITC-UF的光谱学特性第47-49页
        3.3 FITC-UF细胞毒性实验第49-50页
        3.4 方法学考察第50-54页
    4 结论与展望第54-55页
第四章 海带低硫酸化杂多糖(UF)的药代动力学初步研究第55-67页
    1 材料与仪器第55-56页
        1.1 实验材料第55页
        1.2 实验仪器第55-56页
    2 实验方法第56-58页
        2.1 小鼠药代动力学实验方法第56页
        2.2 小鼠组织分布实验方法第56-57页
        2.3 实验样品测定方法第57页
        2.4 药物代谢动力学计算第57-58页
        2.5 组织分布实验数据计算方法第58页
        2.6 数据分析第58页
    3 结果与讨论第58-66页
        3.1 小鼠单次腹腔注射给药FITC-UF血药浓度-时间曲线第58-61页
        3.2 小鼠单次腹腔注射给药FITC-UF药物代谢动力学参数第61-63页
        3.3 小鼠单次腹腔注射给药FITC-UF后器官分布第63-66页
    4 结论与展望第66-67页
第五章 结论与创新点第67-69页
    1 本文主要结论第67-68页
    2 本文主要创新点第68-69页
参考文献第69-76页
附录1 中英文对照表第76-78页
附录2 常用药物代谢动力学参数释义第78-80页
致谢第80-82页
作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果第82页

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