摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-22页 |
1 研究背景 | 第10页 |
2 中药及其制剂中多糖的质量控制方法 | 第10-15页 |
2.1 总糖含量检测方法 | 第10-12页 |
2.2 分子量大小及其分布测定 | 第12页 |
2.3 单糖组成及含量测定 | 第12-15页 |
3 多糖的神经保护活性机制 | 第15-18页 |
3.1 抗氧化活性与Nrf2/HO-1信号通路 | 第15-16页 |
3.2 MAPK信号通路 | 第16页 |
3.3 促进神经细胞突起生长 | 第16页 |
3.4 神经营养作用:提高神经细胞的存活率 | 第16-17页 |
3.5 NF-κB家族 | 第17页 |
3.6 PI3K/Akt信号通路 | 第17页 |
3.7 其他神经营养通路的激活 | 第17-18页 |
4 多糖的药代动力学研究方法 | 第18-20页 |
4.1 色谱法 | 第18页 |
4.2 荧光标记法 | 第18-19页 |
4.3 放射性同位素标记法 | 第19-20页 |
4.4 生物测定法 | 第20页 |
5 选题意义与研究内容 | 第20-22页 |
第二章 海带低硫酸化杂多糖(UF)水解单糖高效液相色谱指纹图谱研究 | 第22-42页 |
1 材料和仪器 | 第22-23页 |
1.1 实验材料 | 第22页 |
1.2 实验仪器 | 第22-23页 |
2 实验方法 | 第23-26页 |
2.1 样品制备 | 第23页 |
2.2 理化性质分析 | 第23-24页 |
2.3 指纹图谱分析 | 第24-26页 |
2.4 数据分析 | 第26页 |
3 结果与讨论 | 第26-41页 |
3.1 理化性质分析 | 第26页 |
3.2 水解及衍生化条件优化 | 第26-29页 |
3.3 方法学考察 | 第29-36页 |
3.4 指纹图谱的建立与分析 | 第36-41页 |
4 结论与展望 | 第41-42页 |
第三章 海带低硫酸化杂多糖(UF)的微量分析方法研究 | 第42-55页 |
1 材料和仪器 | 第42-43页 |
1.1 实验材料 | 第42页 |
1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
2 实验方法 | 第43-46页 |
2.1 荧光标记UF样品的制备 | 第43页 |
2.2 FITC-UF中FITC取代度的测定 | 第43-44页 |
2.3 FITC-UF的光谱学特性 | 第44页 |
2.4 FITC-UF细胞毒性试验 | 第44-45页 |
2.5 方法学考察 | 第45页 |
2.6 数据分析 | 第45-46页 |
3 结果与讨论 | 第46-54页 |
3.1 FITC-UF中FITC取代度的测定 | 第46-47页 |
3.2 FITC-UF的光谱学特性 | 第47-49页 |
3.3 FITC-UF细胞毒性实验 | 第49-50页 |
3.4 方法学考察 | 第50-54页 |
4 结论与展望 | 第54-55页 |
第四章 海带低硫酸化杂多糖(UF)的药代动力学初步研究 | 第55-67页 |
1 材料与仪器 | 第55-56页 |
1.1 实验材料 | 第55页 |
1.2 实验仪器 | 第55-56页 |
2 实验方法 | 第56-58页 |
2.1 小鼠药代动力学实验方法 | 第56页 |
2.2 小鼠组织分布实验方法 | 第56-57页 |
2.3 实验样品测定方法 | 第57页 |
2.4 药物代谢动力学计算 | 第57-58页 |
2.5 组织分布实验数据计算方法 | 第58页 |
2.6 数据分析 | 第58页 |
3 结果与讨论 | 第58-66页 |
3.1 小鼠单次腹腔注射给药FITC-UF血药浓度-时间曲线 | 第58-61页 |
3.2 小鼠单次腹腔注射给药FITC-UF药物代谢动力学参数 | 第61-63页 |
3.3 小鼠单次腹腔注射给药FITC-UF后器官分布 | 第63-66页 |
4 结论与展望 | 第66-67页 |
第五章 结论与创新点 | 第67-69页 |
1 本文主要结论 | 第67-68页 |
2 本文主要创新点 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-76页 |
附录1 中英文对照表 | 第76-78页 |
附录2 常用药物代谢动力学参数释义 | 第78-80页 |
致谢 | 第80-82页 |
作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第82页 |