内容提要 | 第4-9页 |
第一章 绪论 | 第9-15页 |
1.1 药用蕈菌液体发酵概况 | 第9-12页 |
1.1.1 药用蕈菌液体发酵概述 | 第10页 |
1.1.2 药用蕈菌液体发酵的优势 | 第10-11页 |
1.1.3 药用蕈菌液体发酵条件的控制与优化 | 第11-12页 |
1.2 药用蕈菌多糖的研究现状 | 第12-13页 |
1.2.1 蕈菌多糖 | 第12页 |
1.2.2 蕈菌多糖的提取、分离工艺研究现状 | 第12-13页 |
1.3 松茸的研究进展 | 第13页 |
1.3.1 松茸的生物学特性 | 第13页 |
1.3.2 药理学作用 | 第13页 |
1.4 本课题研究意义 | 第13-14页 |
1.5 本课题主要研究内容 | 第14-15页 |
第二章 松茸菌摇瓶发酵工艺的优化 | 第15-32页 |
2.1 引言 | 第15页 |
2.2 材料与仪器 | 第15-17页 |
2.2.1 菌株 | 第15页 |
2.2.2 培养基 | 第15页 |
2.2.3 药品与试剂 | 第15-16页 |
2.2.4 仪器设备 | 第16-17页 |
2.3 实验方法 | 第17-19页 |
2.3.1 培养方法 | 第17页 |
2.3.2 菌丝体干重测定方法 | 第17页 |
2.3.3 实验设计 | 第17-19页 |
2.4 结果与讨论 | 第19-31页 |
2.4.1 碳源对松茸菌发酵的影响 | 第19页 |
2.4.2 氮源对松茸菌发酵的影响 | 第19-20页 |
2.4.3 Plackett-Burman 实验优选摇瓶发酵培养基结果 | 第20-22页 |
2.4.4 培养基优化的中心组合实验 | 第22-26页 |
2.4.5 验证实验 | 第26页 |
2.4.6 摇瓶培养条件对松茸菌发酵的影响 | 第26-31页 |
2.5 本章小结 | 第31-32页 |
第三章 松茸菌丝体多糖提取工艺的优化 | 第32-48页 |
3.1 引言 | 第32页 |
3.2 材料与仪器 | 第32-33页 |
3.2.1 菌株 | 第32页 |
3.2.2 培养基 | 第32页 |
3.2.3 药品与试剂 | 第32-33页 |
3.2.4 仪器设备 | 第33页 |
3.3 实验方法 | 第33-35页 |
3.3.1 松茸菌的培养方法 | 第33页 |
3.3.2 菌丝体干粉的制备 | 第33-34页 |
3.3.3 松茸菌多糖含量的测定 | 第34页 |
3.3.4 松茸菌多糖提取单因素实验 | 第34-35页 |
3.3.5 中心组合实验(Box-Benhnken)设计优化提取条件 | 第35页 |
3.3.6 验证实验 | 第35页 |
3.4 结果与讨论 | 第35-47页 |
3.4.1 多糖标准曲线的绘制 | 第35页 |
3.4.2 超声法提取多糖单因素条件的探索 | 第35-37页 |
3.4.3 中心组合设计实验优化松茸菌多糖的超声提取工艺 | 第37-41页 |
3.4.4 超声提取的验证实验 | 第41页 |
3.4.5 热水浸提法提取多糖单因素条件的探索 | 第41-43页 |
3.4.6 中心组合设计实验优化松茸菌多糖的热水浸提工艺 | 第43-46页 |
3.4.7 热水提取工艺的验证实验 | 第46-47页 |
3.5 本章小结 | 第47-48页 |
第四章 松茸菌多糖抗肿瘤活性的初步研究 | 第48-53页 |
4.1 引言 | 第48页 |
4.2 材料与仪器 | 第48-49页 |
4.2.1 药品与试剂 | 第48页 |
4.2.2 仪器设备 | 第48-49页 |
4.2.3 细胞株 | 第49页 |
4.3 实验方法 | 第49-50页 |
4.3.1 松茸菌丝体多糖样本的制备 | 第49页 |
4.3.2 溶液的配置 | 第49页 |
4.3.3 细胞培养方法 | 第49页 |
4.3.4 细胞生长抑制实验 | 第49-50页 |
4.4 结果与讨论 | 第50-51页 |
4.4.1 松茸菌丝体多糖对人类 B16 黑色素瘤细胞生长的抑制作用 | 第50页 |
4.4.2 松茸菌丝体对人肝癌细胞 SMMC7721 生长的抑制作用 | 第50-51页 |
4.4.3 松茸菌丝体对人宫颈癌细胞 Hela 生长的抑制作用 | 第51页 |
4.5 本章小结 | 第51-53页 |
第五章 结论和后期展望 | 第53-55页 |
5.1 结论 | 第53-54页 |
5.2 后续工作建议 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
摘要 | 第59-60页 |
ABSTRACT | 第60-61页 |