| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1. 绪论 | 第13-31页 |
| 1.1. 氮循环和氨氧化过程 | 第13-14页 |
| 1.2. 氨氧化古菌 | 第14-27页 |
| 1.2.1. 氨氧化古菌的发现 | 第15-17页 |
| 1.2.2. 氨氧化古菌的种类 | 第17-18页 |
| 1.2.3. 氨氧化古菌的生理特性 | 第18-27页 |
| 1.3. 氨氧化细菌 | 第27-29页 |
| 1.3.1. 亚硝化细菌 | 第27页 |
| 1.3.2. 异养硝化-好氧反硝化菌 | 第27-29页 |
| 1.4. 氮化物和水污染 | 第29页 |
| 1.5. 本论文研究意义和研究内容 | 第29-31页 |
| 2. 实验材料与方法 | 第31-44页 |
| 2.1. 实验材料 | 第31-35页 |
| 2.1.1. 菌种 | 第31页 |
| 2.1.2. 主要实验试剂 | 第31-32页 |
| 2.1.3. 仪器设备 | 第32-34页 |
| 2.1.4. 培养基配制 | 第34-35页 |
| 2.2. 实验方法 | 第35-44页 |
| 2.2.1. Nitrosopumilus maritimus的培养 | 第35-36页 |
| 2.2.2. 亚硝酸根的测量 | 第36-37页 |
| 2.2.3. 铵根的测量 | 第37-38页 |
| 2.2.4. 透射电子显微镜 | 第38-39页 |
| 2.2.5. 扫描电子显微镜 | 第39-40页 |
| 2.2.6. 激光共聚焦显微镜 | 第40页 |
| 2.2.7. 高通量测序 | 第40-42页 |
| 2.2.8. 细胞计数 | 第42-44页 |
| 3. Nitrosopumilus maritimus XMU1的生理特性 | 第44-52页 |
| 3.1. Nitrosopumilus maritimus XMU1 | 第44-45页 |
| 3.2. 培养物纯度 | 第45-46页 |
| 3.3. 生长曲线 | 第46-48页 |
| 3.4. 细胞形态 | 第48-50页 |
| 3.5. 基质抑制浓度 | 第50-52页 |
| 4. 不同有机碳源对XMU1氨代谢的影响 | 第52-66页 |
| 4.1. 双碳源情况下有机碳源对XMU1氨代谢的影响 | 第53-59页 |
| 4.1.1. TCA循环中部分有机碳源 | 第53-58页 |
| 4.1.2. 其他有机碳源 | 第58-59页 |
| 4.2. 单碳源情况下有机碳源对SCM1氨代谢影响 | 第59-65页 |
| 4.2.1. 乙酸 | 第60页 |
| 4.2.2. 柠檬酸 | 第60-61页 |
| 4.2.3. 延胡索酸 | 第61-62页 |
| 4.2.4. α-酮戊二酸 | 第62-64页 |
| 4.2.5 丙酮酸 | 第64页 |
| 4.2.6. 琥珀酸 | 第64-65页 |
| 4.3. 本章小结 | 第65-66页 |
| 5. XMU1在微污染水处理中的应用 | 第66-75页 |
| 5.1. 低氨氮下Paracoccus和Pseudomonas的生长曲线 | 第68-69页 |
| 5.2. XMU1与Paracoccus共培养 | 第69-71页 |
| 5.3. XMU1与Pseudomonas共培养 | 第71-74页 |
| 5.4. 本章小结 | 第74-75页 |
| 6. 总结与展望 | 第75-77页 |
| 6.1. 总结 | 第75-76页 |
| 6.2. 展望 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-82页 |
| 发表论文与专利 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
