| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略词 | 第16-17页 |
| 第1章 绪论 | 第17-43页 |
| 1.1 黄芪多糖 | 第18-24页 |
| 1.1.1 黄芪多糖的结构特点 | 第18页 |
| 1.1.2 黄芪多糖的生物学效应 | 第18-24页 |
| 1.2 动物实验替代法 | 第24-27页 |
| 1.2.1 3R原则 | 第24页 |
| 1.2.2 替代法（Alternatives） | 第24-25页 |
| 1.2.3 国外动物实验替代法研究的现状与发展 | 第25-27页 |
| 1.3 体外细胞学实验替代动物实验 | 第27-28页 |
| 1.3.1 正常体细胞体外培养 | 第27-28页 |
| 1.3.2 肿瘤细胞体外培养 | 第28页 |
| 1.4 三维细胞培养（Three-dimensional cell culture, 3D cell culture） | 第28-41页 |
| 1.4.1 三维细胞培养技术 | 第30-33页 |
| 1.4.2 微载体立体培养技术 | 第33-39页 |
| 1.4.3 明胶材料在三维立体培养中的应用 | 第39页 |
| 1.4.4 海藻酸盐水凝胶 | 第39-41页 |
| 1.5 本论文选题内容、目标、意义及创新 | 第41-43页 |
| 1.5.1 本课题的研究内容 | 第41-42页 |
| 1.5.2 本课题的研究目标 | 第42页 |
| 1.5.3 本课题的研究特色及创新之处 | 第42-43页 |
| 第2章 黄芪多糖在二维平面细胞培养中的生物学效应 | 第43-63页 |
| 2.1 材料与方法 | 第43-50页 |
| 2.1.1 主要试剂与仪器 | 第43-45页 |
| 2.1.2 MC-3T3-E1成骨细胞系培养及传代 | 第45-46页 |
| 2.1.3 黄芪多糖细胞毒性测定及实验剂量选择 | 第46页 |
| 2.1.4 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞增殖影响的检测 | 第46-47页 |
| 2.1.5 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞ALP活性影响的检测 | 第47页 |
| 2.1.6 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞钙沉积影响的检测 | 第47-48页 |
| 2.1.7 黄芪多糖对MC-3T3-E1细胞成骨相关基因影响的检测 | 第48-49页 |
| 2.1.8 MC-3T3-E1成骨细胞激光免疫荧光共聚焦观察 | 第49-50页 |
| 2.1.9 统计学分析 | 第50页 |
| 2.2 结果 | 第50-58页 |
| 2.2.1 黄芪多糖对MC-3T3-E1细胞毒性剂量-反应关系 | 第50-51页 |
| 2.2.2 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞增殖的影响 | 第51-52页 |
| 2.2.3 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞ALP活性的影响 | 第52-53页 |
| 2.2.4 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞钙沉积的影响 | 第53-54页 |
| 2.2.5 黄芪多糖对MC-3T3-E1细胞成骨相关基因的影响 | 第54-56页 |
| 2.2.6 MC-3T3-E1成骨细胞激光免疫荧光共聚焦观察 | 第56-58页 |
| 2.3 讨论 | 第58-61页 |
| 2.4 小结 | 第61-63页 |
| 第3章 明胶/海藻酸微载体的制备 | 第63-75页 |
| 3.1 材料与方法 | 第63-66页 |
| 3.1.1 主要试剂与仪器 | 第63页 |
| 3.1.2 明胶/海藻酸微载体的制备 | 第63-64页 |
| 3.1.3 不同明胶和海藻酸钠比例制备微载体 | 第64页 |
| 3.1.4 不同浓度CaCl_2溶液作为接收液制备微载体 | 第64-65页 |
| 3.1.5 不同明胶和海藻酸钠总固体浓度制备微载体 | 第65页 |
| 3.1.6 不同电压制备微载体 | 第65页 |
| 3.1.7 不同距离制备微载体 | 第65页 |
| 3.1.8 不同注射器针头内径制备微载体 | 第65页 |
| 3.1.9 光学倒置显微镜观察 | 第65-66页 |
| 3.1.10 统计学分析 | 第66页 |
| 3.2 结果 | 第66-71页 |
| 3.2.1 不同明胶和海藻酸钠比例对微载体的影响 | 第66页 |
| 3.2.2 不同浓度CaCl_2溶液作为接收液对微载体的影响 | 第66-67页 |
| 3.2.3 不同明胶和海藻酸钠总固体浓度对微载体的影响 | 第67-69页 |
| 3.2.4 不同电压对微载体的影响 | 第69页 |
| 3.2.5 不同距离对微载体的影响 | 第69-70页 |
| 3.2.6 不同注射器针头内径对微载体的影响 | 第70-71页 |
| 3.3 讨论 | 第71-73页 |
| 3.4 小结 | 第73-75页 |
| 第4章 黄芪多糖在细胞/明胶/海藻酸微载体三维立体培养中的生物学效应 | 第75-87页 |
| 4.1 材料与方法 | 第75-78页 |
| 4.1.1 主要试剂与仪器 | 第75-76页 |
| 4.1.2 MC-3T3-E1细胞的接种和培养 | 第76-77页 |
| 4.1.3 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞增殖影响的检测 | 第77页 |
| 4.1.4 MC-3T3-E1 成骨细胞活-死（Live-Dead）细胞染色 | 第77-78页 |
| 4.1.5 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞ALP活性影响的检测 | 第78页 |
| 4.1.6 黄芪多糖对MC-3T3-E1细胞成骨相关基因影响的检测 | 第78页 |
| 4.1.7 统计学分析 | 第78页 |
| 4.2 结果 | 第78-84页 |
| 4.2.1 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞增殖的影响 | 第78-79页 |
| 4.2.2 MC-3T3-E1成骨细胞形态和活-死细胞染色观察 | 第79-81页 |
| 4.2.3 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞ALP活性的影响 | 第81-82页 |
| 4.2.4 黄芪多糖对MC-3T3-E1细胞成骨相关基因的影响 | 第82-84页 |
| 4.3 讨论 | 第84-86页 |
| 4.4 小结 | 第86-87页 |
| 第5章 黄芪多糖在细胞@明胶/海藻酸微载体三维立体培养中的生物学效应 | 第87-99页 |
| 5.1 材料与方法 | 第87-90页 |
| 5.1.1 主要试剂与仪器 | 第87-88页 |
| 5.1.2 MC-3T3-E1细胞的包被和培养 | 第88-89页 |
| 5.1.3 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞增殖影响的检测 | 第89页 |
| 5.1.4 MC-3T3-E1成骨细胞活-死细胞染色 | 第89页 |
| 5.1.5 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞ALP活性影响的检测 | 第89页 |
| 5.1.6 黄芪多糖对MC-3T3-E1细胞成骨相关基因影响的检测 | 第89-90页 |
| 5.1.7 统计学分析 | 第90页 |
| 5.2 结果 | 第90-95页 |
| 5.2.1 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞增殖的影响 | 第90-91页 |
| 5.2.2 MC-3T3-E1成骨细胞形态和活-死细胞染色观察 | 第91-93页 |
| 5.2.3 黄芪多糖对MC-3T3-E1成骨细胞ALP活性的影响 | 第93-94页 |
| 5.2.4 黄芪多糖对MC-3T3-E1细胞成骨相关基因的影响 | 第94-95页 |
| 5.3 讨论 | 第95-97页 |
| 5.4 小结 | 第97-99页 |
| 第6章 二维平面培养和三维立体培养的比较 | 第99-111页 |
| 6.1 材料与方法 | 第99-102页 |
| 6.1.1 主要试剂与仪器 | 第99-100页 |
| 6.1.2 二维平面培养和三维立体培养对MC-3T3-E1细胞增殖影响的比较 | 第100-101页 |
| 6.1.3 二维平面培养和三维立体培养对MC-3T3-E1细胞ALP活性影响的比较 | 第101页 |
| 6.1.4 二维平面培养和三维立体培养对MC-3T3-E1细胞成骨相关基因影响的比较 | 第101-102页 |
| 6.1.5 统计学分析 | 第102页 |
| 6.2 结果 | 第102-107页 |
| 6.2.1 二维平面培养和三维立体培养对MC-3T3-E1细胞增殖的影响 | 第102-104页 |
| 6.2.2 二维平面培养和三维培养对MC-3T3-E1细胞ALP活性的影响 | 第104-105页 |
| 6.2.3 二维平面培养和三维培养对MC-3T3-E1细胞成骨相关基因的影响 | 第105-107页 |
| 6.3 讨论 | 第107-109页 |
| 6.4 小结 | 第109-111页 |
| 结论 | 第111-113页 |
| 研究中的不足之处 | 第113-115页 |
| 展望 | 第115-117页 |
| 参考文献 | 第117-137页 |
| 作者简介及在读期间成果 | 第137-139页 |
| 致谢 | 第139-140页 |
