摘要 | 第9-13页 |
Abstract | 第13-17页 |
第1章 文献综述 | 第18-30页 |
1.1 染色体结构变异 | 第19-21页 |
1.2 小麦染色体结构变异 | 第21-23页 |
1.3 淀粉概述 | 第23-24页 |
1.4 淀粉生物合成机制 | 第24-27页 |
1.4.1 直链淀粉的合成 | 第25-26页 |
1.4.2 支链淀粉的合成 | 第26-27页 |
1.5 淀粉生物降解机制 | 第27-28页 |
1.5.1 叶片中的淀粉降解途径 | 第27页 |
1.5.2 种子中淀粉降解途径 | 第27-28页 |
1.6 立题依据和研究内容 | 第28-30页 |
第2章 基于基因序列分析小麦4A-5A-7B染色体易位和倒位 | 第30-38页 |
2.1 前言 | 第30-31页 |
2.2 材料与方法 | 第31-32页 |
2.3 结果与分析 | 第32-35页 |
2.3.1 5AL染色体上基因的具体分布 | 第32页 |
2.3.2 7BS染色体上基因的具体分布 | 第32-33页 |
2.3.3 ‘4AL’染色体上基因的具体分布 | 第33-34页 |
2.3.4 ‘4AS’染色体上基因的具体分布 | 第34-35页 |
2.4 讨论 | 第35-38页 |
第3章 基于全基因组扫描普通小麦‘中国春’基因型中的染色体臂间倒位 | 第38-52页 |
3.1 前言 | 第38-39页 |
3.2 材料与方法 | 第39-41页 |
3.2.1 数据搜集 | 第39页 |
3.2.2 染色体臂间重排分析 | 第39-40页 |
3.2.3 小麦4A染色体的结构说明 | 第40页 |
3.2.4 3B染色体臂的鉴定 | 第40-41页 |
3.2.5 基于PCR方法验证基因染色体位置 | 第41页 |
3.3 结果与分析 | 第41-47页 |
3.3.1 1A染色体上的臂间重排分析 | 第43-44页 |
3.3.2 第四同源群中的臂间重排分析 | 第44-46页 |
3.3.3 第二、三、五、六和七同源群的染色体重排现象分析 | 第46-47页 |
3.4 讨论 | 第47-52页 |
3.4.1 臂间倒位是一个比较普遍的现象 | 第47-48页 |
3.4.2 臂间倒位是否存在于整倍体的‘中国春’小麦中? | 第48-50页 |
3.4.3 臂间倒位集中于着丝粒附近的区域 | 第50-51页 |
3.4.4 ‘4AS’末端出现一个与4BS和4DS同源的倒位片段 | 第51-52页 |
第4章 基于全基因组分析小麦‘中国春’染色体间的重排现象 | 第52-62页 |
4.1 前言 | 第52-53页 |
4.2 材料与方法 | 第53-54页 |
4.2.1 数据搜集与分析 | 第53-54页 |
4.2.2 小麦4A染色体的结构说明 | 第54页 |
4.2.3 基于PCR方法验证基因染色体位置 | 第54页 |
4.3 结果与分析 | 第54-60页 |
4.4 讨论 | 第60-62页 |
第5章 糯大麦突变体waxy基因分子鉴定与表达分析 | 第62-79页 |
5.1 前言 | 第62-63页 |
5.2 材料与方法 | 第63-67页 |
5.2.1 植物材料 | 第63-64页 |
5.2.2 淀粉测定 | 第64页 |
5.2.3 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第64页 |
5.2.4 waxy基因启动子和开放阅读框的分离 | 第64-65页 |
5.2.5 实时定量PCR(RT-qPCR) | 第65页 |
5.2.6 瞬时表达分析 | 第65-67页 |
5.2.7 淀粉籽粒扫描电镜分析 | 第67页 |
5.2.8 数据整理 | 第67页 |
5.3 结果与分析 | 第67-76页 |
5.3.1 淀粉含量测定和GBSS I蛋白鉴定 | 第67-68页 |
5.3.2 waxy基因的分离和特征性分析 | 第68-71页 |
5.3.3 waxy基因的表达分析 | 第71页 |
5.3.4 其他几个淀粉代谢基因的表达分析 | 第71-72页 |
5.3.5 启动子分析 | 第72-75页 |
5.3.6 淀粉结构观测 | 第75-76页 |
5.4 讨论 | 第76-79页 |
第6章 大麦籽粒皱缩突变体鉴定 | 第79-90页 |
6.1 前言 | 第79-80页 |
6.2 材料与方法 | 第80-84页 |
6.2.1 植物材料 | 第80-82页 |
6.2.2 淀粉测定 | 第82页 |
6.2.3 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第82页 |
6.2.4 waxy基因的分离 | 第82页 |
6.2.5 实时定量PCR(RT-qPCR) | 第82页 |
6.2.6 淀粉籽粒扫描电镜分析 | 第82页 |
6.2.7 数据整理 | 第82-84页 |
6.3 结果与分析 | 第84-88页 |
6.3.1 淀粉测定和颗粒结合蛋白鉴定 | 第84页 |
6.3.2 淀粉代谢主要基因的表达分析 | 第84页 |
6.3.3 waxy基因分离鉴定 | 第84-87页 |
6.3.4 淀粉结构 | 第87-88页 |
6.4 讨论 | 第88-90页 |
第7章 大麦淀粉磷酸化酶基因的结构与表达分析 | 第90-108页 |
7.1 前言 | 第90-91页 |
7.2 材料与方法 | 第91-96页 |
7.2.1 植物材料 | 第91-92页 |
7.2.2 数据搜集 | 第92-93页 |
7.2.3 Pho1和Pho2基因的分离 | 第93页 |
7.2.4 实时定量PCR(RT-qPCR) | 第93页 |
7.2.5 基因结构和蛋白结构分析 | 第93页 |
7.2.6 多重比对和进化分析 | 第93-94页 |
7.2.7 启动子区顺式作用元件的分析 | 第94-95页 |
7.2.8 表达模式分析 | 第95-96页 |
7.3 结果与分析 | 第96-106页 |
7.3.1 Pho1和Pho2基因的特征性分析 | 第96-98页 |
7.3.2 蛋白结构和进化树分析 | 第98-101页 |
7.3.3 表达分析HvPho1和HvPho2基因 | 第101-102页 |
7.3.4 启动子分析和基于芯片技术的表达分析 | 第102-106页 |
7.4 讨论 | 第106-108页 |
第8章 表达分析大麦磷酸酶基因starch excess 4 | 第108-124页 |
8.1 前言 | 第108-109页 |
8.2 材料与方法 | 第109-115页 |
8.2.1 植物材料 | 第109-110页 |
8.2.2 数据搜集 | 第110页 |
8.2.3 SEX4基因的分离 | 第110-112页 |
8.2.4 SEX4基因的染色体定位 | 第112-113页 |
8.2.5 实时定量PCR(RT-qPCR) | 第113页 |
8.2.6 基因结构和蛋白结构分析 | 第113页 |
8.2.7 多重比对和进化分析 | 第113页 |
8.2.8 启动子区顺式作用元件的分析 | 第113-114页 |
8.2.9 表达模式分析 | 第114-115页 |
8.3 结果与分析 | 第115-122页 |
8.3.1 SEX4基因的分离和染色体定位 | 第115-116页 |
8.3.2 SEX4基因结构 | 第116-117页 |
8.3.3 蛋白结构和进化树分析 | 第117-119页 |
8.3.4 SEX4基因的组织特异性表达分析 | 第119-120页 |
8.3.5 SEX4基因昼夜节律表达分析 | 第120-121页 |
8.3.6 SEX4基因在胁迫下的表达调控分析 | 第121-122页 |
8.4 讨论 | 第122-124页 |
第9章 淀粉磷酸酶基因Like Sex Four1和Like Sex Four2具有不同生物学功能 | 第124-138页 |
9.1 前言 | 第124-125页 |
9.2 材料与方法 | 第125-127页 |
9.2.1 数据搜集 | 第125页 |
9.2.2 LSF1和LSF2基因的鉴定 | 第125页 |
9.2.3 LSF1和LSF2基因的染色体定位 | 第125页 |
9.2.4 基因结构和蛋白结构分析 | 第125页 |
9.2.5 多重比对和进化分析 | 第125-126页 |
9.2.6 启动子区顺式作用元件的分析 | 第126页 |
9.2.7 表达模式分析 | 第126-127页 |
9.3 结果与分析 | 第127-136页 |
9.3.1 LSF1和LSF2基因的鉴定和染色体定位 | 第127-128页 |
9.3.2 LSF1和LSF2基因的结构分析 | 第128-129页 |
9.3.3 蛋白结构和进化分析 | 第129页 |
9.3.4 LSF1和LSF2基因的组织特异性表达分析 | 第129-132页 |
9.3.5 LSF1和LSF2基因昼夜节律性分析 | 第132-133页 |
9.3.6 LSF1和LSF2在胁迫下的表达调控分析 | 第133-136页 |
9.4 讨论 | 第136-138页 |
参考文献 | 第138-149页 |
附录 | 第149-244页 |
附表 | 第149-229页 |
附图 | 第229-244页 |
致谢 | 第244-246页 |
攻读博士学位期间发表的论文 | 第246-247页 |