| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第一章 引言 | 第12-26页 |
| 1.1 EGCG的概述 | 第12-17页 |
| 1.1.1 EGCG的简介 | 第12页 |
| 1.1.2 EGCG的抗肿瘤活性 | 第12-13页 |
| 1.1.3 EGCG的抗肿瘤机制 | 第13-17页 |
| 1.1.3.1 抗氧化 | 第13页 |
| 1.1.3.2 诱导肿瘤细胞凋亡 | 第13-14页 |
| 1.1.3.3 阻滞肿瘤细胞生长周期 | 第14-15页 |
| 1.1.3.4 诱使肿瘤细胞DNA损伤 | 第15页 |
| 1.1.3.5 影响肿瘤细胞信号传导 | 第15-17页 |
| 1.1.4 EGCG应用受限的问题 | 第17页 |
| 1.2 β-1g的概述 | 第17-20页 |
| 1.2.1 β-1g的简介 | 第17-18页 |
| 1.2.2 β-1g的聚合特性 | 第18-19页 |
| 1.2.2.1 pH对β-1g聚合影响 | 第18页 |
| 1.2.2.2 蛋白浓度对β-1g聚合影响 | 第18页 |
| 1.2.2.3 温度对β-1g聚合影响 | 第18-19页 |
| 1.2.2.4 其它因素对β-1g聚合影响 | 第19页 |
| 1.2.3 β-1g作为纳米载体的研究进展 | 第19-20页 |
| 1.3 纳米技术 | 第20-22页 |
| 1.3.1 纳米技术的简介 | 第20页 |
| 1.3.2 纳米技术的应用 | 第20-22页 |
| 1.3.2.1 纳米技术在食品领域的应用 | 第20页 |
| 1.3.2.2 纳米技术在化妆品领域的应用 | 第20-21页 |
| 1.3.2.3 纳米技术在医药领域的应用 | 第21-22页 |
| 1.4 Vc | 第22-24页 |
| 1.4.1 Vc的简介 | 第23页 |
| 1.4.2 Vc的抗氧化活性 | 第23页 |
| 1.4.3 Vc的抗癌活性 | 第23-24页 |
| 1.5 本课题研究的目的、意义与内容 | 第24-26页 |
| 1.5.1 本课题研究的主要目的及意义 | 第24-25页 |
| 1.5.2 本课题研究的主要内容 | 第25-26页 |
| 1.5.2.1 EGCG纳米粒的制备及相关测定 | 第25页 |
| 1.5.2.2 EGCG纳米粒体外抗肿瘤活性研究 | 第25页 |
| 1.5.2.3 EGCG纳米粒体外抗肿瘤机制研究 | 第25-26页 |
| 第二章 EGCG纳米粒的制备及其相关测定 | 第26-30页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.1 材料 | 第26页 |
| 2.1.2 仪器 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-28页 |
| 2.2.1 EGCG纳米粒等样品的制备 | 第27页 |
| 2.2.2 EGCG纳米粒粒径及Zeta电位的测定 | 第27页 |
| 2.2.3 EGCG纳米粒包埋率及载药量的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.4 统计分析 | 第28页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第28-29页 |
| 2.3.1 EGCG纳米粒粒径、Zeta电位、包埋率与载药量 | 第28-29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-30页 |
| 第三章 EGCG纳米粒体外抗肿瘤活性研究 | 第30-37页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第30-31页 |
| 3.1.1 材料 | 第30页 |
| 3.1.2 仪器 | 第30-31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-32页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第31页 |
| 3.2.2 样品处理 | 第31页 |
| 3.2.3 MTT法检测细胞增殖抑制率 | 第31-32页 |
| 3.2.4 统计分析 | 第32页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第32-36页 |
| 3.3.1 EGCG纳米粒的抗肿瘤活性增效作用 | 第32-36页 |
| 3.3.1.1 A375人体黑色素瘤细胞模型 | 第32-34页 |
| 3.3.1.2 TE-1人食管癌细胞模型 | 第34-36页 |
| 3.4 本章小结 | 第36-37页 |
| 第四章 EGCG纳米粒抗肿瘤机制 | 第37-58页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第37-38页 |
| 4.1.1 材料 | 第37-38页 |
| 4.1.2 仪器 | 第38页 |
| 4.2 实验方法 | 第38-42页 |
| 4.2.1 细胞接种 | 第38页 |
| 4.2.2 样品处理 | 第38-39页 |
| 4.2.3 Annexin V-FITC细胞凋亡检测法 | 第39页 |
| 4.2.4 单细胞凝胶电泳 | 第39-40页 |
| 4.2.4.1 收获细胞 | 第39页 |
| 4.2.4.2 制胶 | 第39页 |
| 4.2.4.3 裂解 | 第39页 |
| 4.2.4.4 电泳 | 第39-40页 |
| 4.2.4.5 中和与染色 | 第40页 |
| 4.2.4.6 观察与统计 | 第40页 |
| 4.2.5 吉姆萨染色 | 第40页 |
| 4.2.6 细胞周期阻滞 | 第40页 |
| 4.2.7 Western-blot法 | 第40-42页 |
| 4.2.7.1 制备蛋白样品 | 第40-41页 |
| 4.2.7.2 电泳 | 第41页 |
| 4.2.7.3 转膜 | 第41页 |
| 4.2.7.4 封闭 | 第41页 |
| 4.2.7.5 一抗孵育 | 第41页 |
| 4.2.7.6 二抗孵育 | 第41-42页 |
| 4.2.7.7 蛋白检测 | 第42页 |
| 4.2.8 统计分析 | 第42页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第42-56页 |
| 4.3.1 EGCG纳米粒对肿瘤细胞凋亡率与坏死率的影响 | 第42-45页 |
| 4.3.1.1 A375细胞模型 | 第42-44页 |
| 4.3.1.2 TE-1细胞模型 | 第44-45页 |
| 4.3.2 EGCG纳米粒对肿瘤细胞的DNA损伤作用 | 第45-49页 |
| 4.3.2.1 A375细胞模型 | 第46-48页 |
| 4.3.2.2 TE-1细胞模型 | 第48-49页 |
| 4.3.3 EGCG纳米粒对肿瘤细胞周期的影响 | 第49-53页 |
| 4.3.3.1 A375细胞模型 | 第49-51页 |
| 4.3.3.2 TE-1细胞模型 | 第51-53页 |
| 4.3.4 EGCG纳米粒对肿瘤细胞相关蛋白表达的影响 | 第53-56页 |
| 4.3.4.1 A375细胞模型 | 第54-55页 |
| 4.3.4.2 TE-1细胞模型 | 第55-56页 |
| 4.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第五章 全文总结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 附录 硕士期间完成的论文 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
