| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-31页 |
| 1.1 NO_x的来源及排放现状 | 第12-13页 |
| 1.2 NO_x的危害 | 第13-15页 |
| 1.3 NO_x治理技术的研究现状 | 第15-25页 |
| 1.3.1 气相反应脱硝技术 | 第15-19页 |
| 1.3.2 吸附法 | 第19-20页 |
| 1.3.3 等离子体法 | 第20-21页 |
| 1.3.4 吸收法 | 第21-22页 |
| 1.3.5 生物法 | 第22-24页 |
| 1.3.6 络合吸收-生物还原法 | 第24-25页 |
| 1.4 变性梯度凝胶电泳(DGGE)技术的原理和应用 | 第25-28页 |
| 1.4.1 原理 | 第26-27页 |
| 1.4.2 应用 | 第27-28页 |
| 1.5 课题意义及研究内容 | 第28-31页 |
| 1.5.1 课题研究意义与目的 | 第28-29页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第29-30页 |
| 1.5.3 课题创新之处 | 第30页 |
| 1.5.4 课题来源 | 第30-31页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第31-40页 |
| 2.1 实验试剂与仪器 | 第31-33页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第31-33页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第33页 |
| 2.2 分析测试方法 | 第33-35页 |
| 2.2.1 铁离子浓度的测定方法 | 第33-34页 |
| 2.2.2 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO浓度测定方法 | 第34页 |
| 2.2.3 N_2O的测定 | 第34-35页 |
| 2.3 Fe~Ⅲ(EDTA)和Fe~Ⅱ(EDTA)-NO的生物还原 | 第35-36页 |
| 2.3.1 污泥来源 | 第35页 |
| 2.3.2 污泥的驯化和培养 | 第35页 |
| 2.3.3 Fe~Ⅲ(EDTA)的生物还原 | 第35页 |
| 2.3.4 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO的生物还原 | 第35-36页 |
| 2.4 不同参数条件下的群落结构及优势菌属变化 | 第36-40页 |
| 2.4.1 DNA提取 | 第36-37页 |
| 2.4.2 PCR扩增 | 第37页 |
| 2.4.3 DGGE分析 | 第37-38页 |
| 2.4.4 割胶回收DNA片段和PCR扩增 | 第38-39页 |
| 2.4.5 16S rDNA测序及同源性比较 | 第39-40页 |
| 第三章 BioDeNOx体系中Fe~Ⅲ(EDTA)的生物还原研究 | 第40-47页 |
| 3.1 碳源对Fe~Ⅲ(EDTA)生物还原的影响 | 第40-41页 |
| 3.2 pH对Fe~Ⅲ(EDTA)生物还原的影响 | 第41-42页 |
| 3.3 NO_3~-和NO_2~-对Fe~Ⅲ(EDTA)生物还原的影响 | 第42-44页 |
| 3.4 SO_3~(2-)对Fe~Ⅲ(EDTA)生物还原的影响 | 第44-45页 |
| 3.5 本章小结 | 第45-47页 |
| 第四章 BioDeNOx体系中Fe~Ⅱ(EDTA)-NO的生物还原研究 | 第47-58页 |
| 4.1 碳源对Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原的影响 | 第47-48页 |
| 4.2 温度对Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原的影响 | 第48-49页 |
| 4.3 pH对Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原的影响 | 第49-50页 |
| 4.4 Fe~Ⅱ(EDTA)浓度对Fe~Ⅱ(EDTA)-NO生物还原的影响 | 第50-51页 |
| 4.5 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO还原过程中N_2O的排放 | 第51-56页 |
| 4.5.1 碳源添加量对还原体系中N_2O生成的影响 | 第52-53页 |
| 4.5.2 pH对还原体系中N_2O生成的影响 | 第53-54页 |
| 4.5.3 温度对还原体系中N_2O生成的影响 | 第54-55页 |
| 4.5.4 FeⅡ(EDTA)对还原体系中N_2O生成的影响 | 第55-56页 |
| 4.6 本章小结 | 第56-58页 |
| 第五章 Fe~Ⅲ(EDTA)还原过程中的微生物群落结构分析 | 第58-67页 |
| 5.1 不同影响因素条件的样品采集 | 第58页 |
| 5.2 Fe~Ⅲ(EDTA)还原过程中样品基因组DNA提取和PCR扩增 | 第58-60页 |
| 5.2.1 样品DNA提取 | 第58-59页 |
| 5.2.2 PCR扩增 | 第59-60页 |
| 5.3 Fe~Ⅲ(EDTA)还原过程中样品DGGE分析 | 第60-62页 |
| 5.4 Fe~Ⅲ(EDTA)还原过程中样品DGGE割胶条带测序结果分析 | 第62-65页 |
| 5.4.1 割胶回收DNA的PCR扩增 | 第62-63页 |
| 5.4.2 割胶回收条带测序 | 第63-65页 |
| 5.5 本章小结 | 第65-67页 |
| 第六章 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO还原过程中的微生物群落结构分析 | 第67-76页 |
| 6.1 不同温度和电子供体下样品的采集 | 第67页 |
| 6.2 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO还原过程中样品基因组DNA提取和PCR扩增 | 第67-69页 |
| 6.2.1 样品DNA提取 | 第67-68页 |
| 6.2.2 PCR扩增 | 第68-69页 |
| 6.3 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO还原过程中样品DGGE分析 | 第69-71页 |
| 6.4 Fe~Ⅱ(EDTA)-NO还原过程中样品DGGE割胶条带测序结果分析 | 第71-74页 |
| 6.4.1 割胶回收DNA的PCR扩增 | 第72页 |
| 6.4.2 割胶回收条带测序 | 第72-74页 |
| 6.5 本章小结 | 第74-76页 |
| 第七章 结论和建议 | 第76-80页 |
| 7.1 结论 | 第76-78页 |
| 7.2 建议和展望 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第89页 |
