| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 文献回顾 | 第16-25页 |
| 第一部分 低温对失血性休克炎症小体活化影响的研究 | 第25-34页 |
| 1 材料 | 第26-27页 |
| 1.1 实验动物 | 第26页 |
| 1.2 主要试剂 | 第26页 |
| 1.3 主要仪器 | 第26-27页 |
| 1.4 主要药物及溶剂的配制 | 第27页 |
| 2 方法 | 第27-30页 |
| 2.1 SD大鼠失血性休克模型的制备 | 第27-28页 |
| 2.2 标本留取 | 第28页 |
| 2.3 苏木精-伊红（HE）染色 | 第28-29页 |
| 2.4 湿/干比重 | 第29页 |
| 2.5 Western blotting法 | 第29页 |
| 2.6 肺组织中NLRP3和caspase-1 的RT-PCR检测 | 第29-30页 |
| 2.7 统计学方法 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-32页 |
| 3.1 HE染色肺组织结果观察 | 第30-31页 |
| 3.2 低温对肺组织湿/干比重的影响 | 第31页 |
| 3.3 低温对肺组织NLRP-3 和caspase-1 蛋白表达的影响 | 第31页 |
| 3.4 低温对肺组织中NLRP-3 和IL-1β mRNA表达的影响 | 第31-32页 |
| 4 讨论 | 第32-34页 |
| 第二部分 治疗性低温对内皮细胞缺血再灌注损伤线粒体功能影响的研究 | 第34-45页 |
| 1 材料 | 第35-36页 |
| 1.1 实验细胞 | 第35页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第35页 |
| 1.3 主要试剂 | 第35-36页 |
| 1.4 主要药物及溶剂的配制 | 第36页 |
| 2 方法 | 第36-39页 |
| 2.1 人脐静脉内皮细胞系（HUVEC）培养及缺血再灌注模型的制备 | 第36页 |
| 2.2 细胞培养 | 第36-37页 |
| 2.3 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第37-38页 |
| 2.4 免疫荧光检测胞浆线粒体的数量 | 第38页 |
| 2.5 检测细胞ATP的浓度 | 第38-39页 |
| 2.6 流式细胞仪检测线粒体膜电位 | 第39页 |
| 2.7 统计学方法 | 第39页 |
| 3 结果 | 第39-43页 |
| 3.1 治疗性低温对细胞凋亡影响 | 第39-41页 |
| 3.2 治疗性低温对线粒体数量影响 | 第41-42页 |
| 3.3 治疗性低温对细胞内ATP的浓度影响 | 第42-43页 |
| 3.4 治疗性低温对线粒体膜电位的影响 | 第43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| 第三部分 治疗性低温对内皮细胞缺血再灌注损伤炎性小体NLRP3活化的影响 | 第45-54页 |
| 1 材料 | 第45-46页 |
| 1.1 实验试剂 | 第45-46页 |
| 1.2 实验试剂配制 | 第46页 |
| 1.3 实验分组 | 第46页 |
| 2 方法 | 第46-50页 |
| 2.1 Western blotting检测NLRP-3 和caspase-1 含量 | 第46-49页 |
| 2.2 流式细胞仪检测胞浆中ROS的水平 | 第49-50页 |
| 2.3 ELISA检测培养液中IL-1β 和IL-18含量 | 第50页 |
| 2.4 统计学方法 | 第50页 |
| 3 结果 | 第50-52页 |
| 3.1 治疗性低温对NLRP-3 和Capase-1 蛋白表达的影响 | 第50-52页 |
| 3.2 治疗性低温对胞浆中ROS的水平影响 | 第52页 |
| 3.3 治疗性低温对细胞分泌IL-1β 和IL-18含量影响 | 第52页 |
| 4 讨论 | 第52-54页 |
| 小结 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 个人简历和研究成果 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
