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Nox4在顺铂诱导的急性肾损伤中的功能及作用机制研究

中英文缩略词对照第7-10页
中文摘要第10-14页
Abstract第14-18页
1 前言第19-21页
2 实验材料第21-24页
    2.1 实验动物第21页
    2.2 试剂第21-22页
    2.3 仪器与设备第22-23页
    2.4 图象分析软件第23-24页
3 实验方法第24-34页
    3.1 细胞培养第24页
    3.2 ROS试剂盒检测HK2细胞内ROS水平的变化第24页
    3.3 Western blot方法检测HK2细胞与小鼠肾脏组织中相关基因的蛋白表达第24-27页
    3.4 Real-time PCR方法检测HK2细胞与小鼠肾脏组织中相关炎症因子的mRNA水平第27-29页
    3.5 免疫荧光第29页
    3.6 细胞转染实验第29-30页
    3.7 流式细胞术检测细胞凋亡与坏死变化第30页
    3.8 顺铂诱导的急性肾损伤小鼠模型的建立第30页
    3.9 PAS染色检测糖原在肾脏组织的沉积第30页
    3.10 血清学指标第30-31页
    3.11 免疫组化方法检测相关蛋白在肾组织中的表达第31-32页
    3.12 MTT比色法检测细胞增殖第32页
    3.13 通过慢病毒包装的Nox4shRNA在小鼠体内沉默Nox4表达,观察在体沉默Nox4对顺铂诱导的急性肾损伤的治疗作用第32-33页
    3.14 HK2、肿瘤细胞以及小鼠的分组与处理第33-34页
    3.15 数据处理第34页
4 实验结果第34-70页
    4.1 ROS抑制剂NAC预处理HK2细胞,发现ROS促进顺铂诱导的急性肾损伤第34-39页
        4.1.1 顺铂刺激的HK2细胞中存在ROS水平的上调第34-35页
        4.1.2 ROS促进顺铂刺激的急性肾损伤及可能的调控机制第35-39页
    4.2 用apocynin进行处理,发现Noxs促进顺铂诱导的急性肾损伤第39-51页
        4.2.1 在体外实验中,用apocynin预处理HK2细胞,发现NADPHoxidases促进顺铂诱导的急性肾损伤第39-45页
        4.2.2 在体内实验,小鼠腹腔注射apocynin,发现NADPH oxidases促进顺铂诱导的急性肾损伤第45-51页
    4.3 在体内、外实验中,顺铂引起的急性肾损伤上调Nox4的表达第51-53页
        4.3.1 在HK2细胞上,顺铂上调Nox4的表达第51页
        4.3.2 在体内实验上,顺铂上调Nox4的表达第51-53页
    4.4 在体外实验中,Nox4促进顺铂诱导的急性肾损伤第53-58页
        4.4.1 沉默Nox4抑制顺铂诱导的急性肾损伤过程第53-55页
        4.4.2 过表达Nox4促进顺铂诱导的急性肾损伤过程第55-58页
    4.5 在Nox4过表达细胞株上,NAC抑制Nox4促进顺铂诱导的急性肾损伤作用第58-61页
        4.5.1 NAC抑制Nox4促进顺铂诱导的肾损伤因子KIM-1 的表达第58-59页
        4.5.2 NAC抑制Nox4促进顺铂诱导的凋亡与程序性坏死相关蛋白的表达第59页
        4.5.3 NAC抑制Nox4促进顺铂诱导炎症因子的表达第59-61页
    4.6 小鼠尾静脉注射包装Nox4shRNA的慢病毒,发现在体沉默Nox4一只顺铂诱导的急性肾损伤第61-68页
        4.6.1 在体沉默Nox4减轻肾脏组织中Nox4的表达第61-62页
        4.6.2 在体沉默Nox4减轻顺铂诱导的肾脏病理学和肾功能的改变第62-64页
        4.6.3 在体沉默Nox4抑制顺铂诱导的肾损伤因子KIM-1 的表达第64-65页
        4.6.4 在体沉默Nox4抑制顺铂诱导的凋亡和程序性坏死相关蛋白的表达第65-66页
        4.6.5 在体沉默Nox4抑制顺铂诱导的炎症因子的水平第66-68页
    4.7 在肿瘤细胞株上,沉默Nox4不影响顺铂对肿瘤的治疗作用第68-69页
    4.8 Nox4通过ROS介导的程序性坏死、凋亡与炎症促进顺铂诱导的急性肾损伤第69-70页
5 讨论第70-74页
6 结论第74-75页
参考文献第75-80页
附录第80-82页
致谢第82-83页
综述第83-108页
    References第97-108页

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