| 中文摘要 | 第4-5页 |
| 英文摘要 | 第5-6页 |
| 第一章 综述 | 第10-27页 |
| 1. 肿瘤血管靶向治疗的进展 | 第10-11页 |
| 2. 内皮抑素的发现 | 第11-12页 |
| 3. 内皮抑素的生物学结构 | 第12页 |
| 4. 内皮抑素的分布 | 第12-13页 |
| 5. 内皮抑素的生物学功能 | 第13-14页 |
| 5.1 内皮抑素抑制内皮细胞增殖、迁移作用 | 第13页 |
| 5.2 内皮抑素对新生血管生成的抑制作用 | 第13页 |
| 5.3 内皮抑素对肿瘤的生长和转移的抑制作用,促进肿瘤细胞凋亡 | 第13-14页 |
| 6. 内皮抑素的作用机制 | 第14-16页 |
| 7. 内皮抑素存在的问题 | 第16-17页 |
| 8. 恩度(endostar) | 第17-19页 |
| 9. 血管内皮生长因子(VEGF)和血管内皮生长因子受体(VEGFR) | 第19-21页 |
| 参考文献 | 第21-27页 |
| 第二章 人内皮抑素胶乳增强免疫比浊法检测试剂盒 | 第27-44页 |
| 1. 引言 | 第27页 |
| 2. 材料和方法 | 第27-32页 |
| 2.1 材料 | 第27-28页 |
| 2.2 方法 | 第28-32页 |
| 3. 结果与分析 | 第32-41页 |
| 3.1 ELISA检测重组人内皮抑素抗体的标准曲线 | 第32页 |
| 3.2 胶乳原液稀释标准曲线 | 第32-33页 |
| 3.3 胶乳颗粒粒径的选择 | 第33-34页 |
| 3.4 胶乳浓度的选择 | 第34-35页 |
| 3.5 波长的选择 | 第35-37页 |
| 3.6 不同加样量的比较 | 第37页 |
| 3.7 不同反应时间的比较 | 第37-38页 |
| 3.8 PEG6000与PEG2000的比较 | 第38页 |
| 3.9 PEG6000浓度的选择 | 第38-39页 |
| 3.10 NaN_3与PC 300的比较 | 第39页 |
| 3.11 HITACHI 7060全自动生化分析仪检测 | 第39-40页 |
| 3.12 胶乳增强免疫比浊法检测重组人内皮抑素试剂盒 | 第40页 |
| 3.13 酵母表达的重组人内皮抑素浓度的检测 | 第40-41页 |
| 4. 讨论 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-44页 |
| 第三章 转铁蛋白胶乳增强免疫比浊法检测试剂盒的初步研究 | 第44-58页 |
| 1. 引言 | 第44页 |
| 2. 材料、试剂和方法 | 第44-51页 |
| 2.1 材料 | 第44页 |
| 2.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 2.3 主要仪器 | 第45页 |
| 2.4 转铁蛋白表达质粒的构建 | 第45-51页 |
| 3. 结果 | 第51-56页 |
| 3.1 Tf基因PCR电泳结果 | 第51页 |
| 3.2 pET28a质粒及TfPCR模板质粒电泳结果 | 第51-52页 |
| 3.3 Tf基因PCR产物酶切、pET28a质粒酶切 | 第52页 |
| 3.4 重组质粒的鉴定 | 第52-56页 |
| 4. 讨论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-58页 |
| 第四章 依诺沙星抗肿瘤新适应症研究 | 第58-69页 |
| 1. 引言 | 第58-59页 |
| 2. 材料方法 | 第59-65页 |
| 2.1 材料 | 第59-60页 |
| 2.2 细胞培养 | 第60页 |
| 2.3 CCK-8检测依诺沙星对细胞活力的影响 | 第60-61页 |
| 2.4 siRNA的转染 | 第61-62页 |
| 2.5 细胞总RNA的提取 | 第62-63页 |
| 2.6 逆转录PCR(RT-PCR) | 第63页 |
| 2.7 荧光定量PCR(qPCR) | 第63-65页 |
| 3. 结果 | 第65-67页 |
| 3.1 CCK-8检测依诺沙星对BGC-803,HB2细胞活力的影响效果 | 第65-66页 |
| 3.2 BGC-803细胞VEGF-mRNA、HB2细胞bcl-2-mRNA相对表达量 | 第66-67页 |
| 4. 讨论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
