| 中文摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1. 前言 | 第12-14页 |
| 2. 线粒体参与运动改善系统性低水平炎症的研究进展(文献综述) | 第14-29页 |
| 2.1 PGC-1α在运动抗氧化效应在抗炎过程中的分子制 | 第15-18页 |
| 2.1.1 运动调控PGC-1α的表达 | 第15-17页 |
| 2.1.2 PGC-1α调控抗氧化酶的表达 | 第17-18页 |
| 2.1.3 PGC-1α的抗炎作用 | 第18页 |
| 2.2 Nrf-2的综合调控作用 | 第18-20页 |
| 2.3 线粒体源性ROS的健康效应 | 第20-21页 |
| 2.4 运动诱导抗炎细胞因子产生及表达 | 第21-24页 |
| 2.4.1 系统性低水平炎症及其后果 | 第22页 |
| 2.4.2 IL-6 | 第22-23页 |
| 2.4.3 TNF-α | 第23-24页 |
| 2.5 线粒体稳态在细胞抗炎进程中的贡献 | 第24-29页 |
| 2.5.1 线粒体生物合成在抗炎反应中的作用 | 第25-26页 |
| 2.5.2 线粒体重构对氧化还原信号的影响 | 第26-27页 |
| 2.5.3 线粒体自噬在抗炎反应中的核心作用 | 第27-29页 |
| 2.6 问题的提出 | 第29页 |
| 3. 实验设计与研究方法 | 第29-55页 |
| 3.1 实验设计 | 第29-30页 |
| 3.2 技术路线 | 第30-31页 |
| 3.3 动物分组和训练方案 | 第31-32页 |
| 3.3.1 实验动物及饲 | 第31页 |
| 3.3.2 实验动物分组及训练方案 | 第31-32页 |
| 3.4 实验方法 | 第32-54页 |
| 3.4.1 取材 | 第32页 |
| 3.4.2 骨骼肌线粒体提取 | 第32-34页 |
| 3.4.3 线粒体总蛋白含量测定 | 第34页 |
| 3.4.4 线粒体呼吸功能测定 | 第34-37页 |
| 3.4.5 线粒体活性氧ROS生成速率测定 | 第37-38页 |
| 3.4.6 线粒体膜电位(△φm)测定 | 第38页 |
| 3.4.7 骨骼肌丙二醛(MDA)含量测定 | 第38-39页 |
| 3.4.8 骨骼肌Mn-SOD活力测定 | 第39-40页 |
| 3.4.9 骨骼肌黄嘌呤氧化酶活力(XOD)测定 | 第40-41页 |
| 3.4.10 骨骼肌组织学观察 | 第41-43页 |
| 3.4.11 实时荧光定量PCR(RT-PCR)检测相关基因表达 | 第43-48页 |
| 3.4.12 Western blot法检测相关蛋白表达 | 第48-52页 |
| 3.4.13 ELISA检测血清IL-6,TNF | 第52-54页 |
| 3.5 统计学处理 | 第54-55页 |
| 4. 实验结果 | 第55-111页 |
| 4.1 不同运动模式下ROS对IL-6生物学效应的影响 | 第55-69页 |
| 4.1.1 不同运动模式下线粒体ROS生成速率的变化 | 第55-56页 |
| 4.1.2 不同运动模式下小鼠血清IL-6及TNF-α含量的变化 | 第56-59页 |
| 4.1.3 不同运动模式下小鼠骨骼肌形态及炎性细胞浸润观察 | 第59-61页 |
| 4.1.4 不同运动模式下骨骼肌IL-6基因与蛋白的变化 | 第61-63页 |
| 4.1.5 不同运动模式下骨骼肌PGC-1α、COX Ⅳ及Nrf-2基因与蛋白的变化 | 第63-66页 |
| 4.1.6 不同运动模式下骨骼肌NF-κB-p65、TNF-α基因与蛋白的变化 | 第66-69页 |
| 4.2 不同运动模式对线粒体功能及线粒体稳态的影响 | 第69-83页 |
| 4.2.1 不同运动模式下线粒体功能的变化 | 第69-73页 |
| 4.2.2 不同运动模式下线粒体生物合成基因与蛋白的变化 | 第73-76页 |
| 4.2.3 不同运动模式下线粒体融合分裂基因与蛋白的变化 | 第76-83页 |
| 4.3 Nrf-2在不同运动模式中对IL-6不同生物学效应的影响 | 第83-111页 |
| 4.3.1 各组中Nrf-2基因及蛋白表达 | 第83-85页 |
| 4.3.2 Nrf2干预下不同运动模式中线粒体功能的变化 | 第85-88页 |
| 4.3.3 Nrf2干预下不同运动模式中线粒体ROS生成速率的变化 | 第88-90页 |
| 4.3.4 Nrf2干预下不同运动模式中骨骼肌MDA、T-SOD、Mn-SOD及XOD含量变化 | 第90-93页 |
| 4.3.5 Nrf2干预下不同运动模式中小鼠血清IL-6及TNF-α含量变化 | 第93-96页 |
| 4.3.6 Nrf2干预下不同运动模式中小鼠骨骼肌形态及炎性细胞浸润观察 | 第96-98页 |
| 4.3.7 Nrf2干预下不同运动模式中小鼠骨骼肌IL-6基因及蛋白表达变化 | 第98-101页 |
| 4.3.8 Nrf2干预下不同运动模式中小鼠骨骼肌PGC-1α、COX Ⅳ基因及蛋白表达的变化 | 第101-106页 |
| 4.3.9 Nrf2干预下不同运动模式中小鼠骨骼肌NF-κB-p65、TNF-α基因及蛋白表达的变化 | 第106-111页 |
| 5. 分析与讨论 | 第111-132页 |
| 5.1 不同运动模式下ROS对IL-6生物学效应的影响及相关机制 | 第111-116页 |
| 5.1.1 不同运动模式下小鼠骨骼肌形态学观察 | 第111-112页 |
| 5.1.2 不同运动模式下线粒体源性ROS生成速率的特点 | 第112-113页 |
| 5.1.3 不同运动模式下小鼠骨骼肌IL-6及TNF-α的表达 | 第113-114页 |
| 5.1.4 不同运动模式下小鼠骨骼肌中PGC-1α/NF-κB的切换及其相关机制 | 第114-116页 |
| 5.1.5 小结 | 第116页 |
| 5.2 线粒体稳态在不同模式运动诱导IL-6生物学效应调节中的作用 | 第116-124页 |
| 5.2.1 不同运动模式下小鼠骨骼肌能量代谢的特点 | 第116-117页 |
| 5.2.2 不同运动模式下小鼠骨骼肌线粒体生物合成及融合分裂活动的变化特点 | 第117-123页 |
| 5.2.3 小结 | 第123-124页 |
| 5.3 Nrf-2对两种运动模式下IL-6生物学功能的影响 | 第124-132页 |
| 5.3.1 不同运动模式下Nrf-2的表达及不同药物对Nrf-2的干预效果 | 第124-125页 |
| 5.3.2 不同干预模式下小鼠骨骼肌形态的影响 | 第125页 |
| 5.3.3 Nrf-2对不同运动模式中线粒体能量代谢的影响 | 第125-126页 |
| 5.3.4 Nrf-2对不同运动模式中小鼠骨骼肌氧化还原状态的影响 | 第126-128页 |
| 5.3.5 Nrf-2对不同运动模式中PGC-1α/NF-κB切换表达的影响 | 第128-130页 |
| 5.3.6 Nrf-2对不同运动模式中小鼠骨骼肌IL-6及TNF-α表达的影响 | 第130-131页 |
| 5.3.7 小结 | 第131-132页 |
| 6. 结论 | 第132-133页 |
| 致谢 | 第133-135页 |
| 参考文献 | 第135-151页 |
| 附录 | 第151-153页 |
| 个人简历 在读期间发表的学术论文与研究成果 | 第153页 |
