| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 文献综述 | 第10-19页 |
| 1 河蚬研究现状 | 第10-11页 |
| 1.1 河蚬的营养价值及功能成分 | 第10-11页 |
| 1.1.1 活性多糖 | 第10页 |
| 1.1.2 活性蛋白类 | 第10-11页 |
| 1.1.3 活性脂类 | 第11页 |
| 1.2 河蚬开发利用现状 | 第11页 |
| 2 水产活性多肽的研究进展 | 第11-16页 |
| 2.1 常见水产活性多肽 | 第11-12页 |
| 2.2 水产活性多肽提取方法 | 第12-14页 |
| 2.2.1 水产活性多肽制备 | 第12-13页 |
| 2.2.2 水产活性多肽分离纯化 | 第13-14页 |
| 2.3 水产活性多肽的功能 | 第14-16页 |
| 2.3.1 抗氧化活性 | 第14-15页 |
| 2.3.2 其他活性 | 第15-16页 |
| 3 化学性肝损伤研究进展 | 第16-18页 |
| 3.1 肝损伤的原因 | 第16页 |
| 3.2 肝损伤的发生机制 | 第16-18页 |
| 3.2.1 肝损伤化学性机制 | 第16-17页 |
| 3.2.2 肝损伤免疫性机制 | 第17-18页 |
| 3.3 化学性肝损伤模型的建立 | 第18页 |
| 4 立项背景和意义 | 第18页 |
| 5 本论文主要研究内容 | 第18-19页 |
| 第一章 河蚬软体部分营养分析 | 第19-23页 |
| 1 材料 | 第19页 |
| 1.1 原材料 | 第19页 |
| 1.2 试剂与设备 | 第19页 |
| 2 方法 | 第19-20页 |
| 2.1 试验材料处理 | 第19页 |
| 2.2 营养素测定方法 | 第19-20页 |
| 2.2.1 一般营养素测定 | 第19-20页 |
| 2.2.2 氨基酸成分测定 | 第20页 |
| 2.3 氨基酸组成营养分析 | 第20页 |
| 3 试验结果分析 | 第20-22页 |
| 3.1 河蚬粗营养成分分析 | 第20-21页 |
| 3.2 氨基酸组成分析 | 第21-22页 |
| 4 讨论 | 第22-23页 |
| 第二章 河蚬多肽制备 | 第23-35页 |
| 1 材料与设备 | 第23页 |
| 1.1 实验原材料 | 第23页 |
| 1.2 主要试剂 | 第23页 |
| 1.3 主要实验仪器设备 | 第23页 |
| 2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.1 最佳酶制剂筛选 | 第23-24页 |
| 2.2 相关指标测定方法 | 第24页 |
| 2.2.1 水解度测定方法 | 第24页 |
| 2.2.2 DPPH清除率测定方法 | 第24页 |
| 2.3 响应面优化试验 | 第24-25页 |
| 3 结果分析 | 第25-33页 |
| 3.1 酶制剂筛选试验结果分析 | 第25-26页 |
| 3.2 单因素试验结果分析 | 第26-29页 |
| 3.2.1 加酶量对DPPH清除率的影响 | 第26-27页 |
| 3.2.2 pH对DPPH清除率的影响 | 第27-28页 |
| 3.2.3 酶解温度对DPPH清除率的影响 | 第28页 |
| 3.2.4 酶解时间对DPPH清除率的影响 | 第28-29页 |
| 3.3 响应曲面优化酶解试验 | 第29-33页 |
| 3.3.1 试验设计 | 第29-30页 |
| 3.3.2 试验结果分析 | 第30-33页 |
| 3.3.3 响应面优化 | 第33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 第三章 河蚬多肽分离及抗氧化活性与稳定性研究 | 第35-46页 |
| 1 材料与设备 | 第35-36页 |
| 1.1 实验原材料 | 第35页 |
| 1.2 主要试剂 | 第35页 |
| 1.3 主要实验仪器设备 | 第35-36页 |
| 2 实验方法 | 第36-37页 |
| 2.1 河蚬多肽超滤分离 | 第36页 |
| 2.2 河蚬多肽抗氧化活性 | 第36页 |
| 2.2.1 河蚬多肽清除羟自由基能力 | 第36页 |
| 2.2.2 河蚬多肽清除DPPH自由基能力 | 第36页 |
| 2.3 河蚬多肽稳定性 | 第36-37页 |
| 2.3.1 温度对河蚬多肽稳定性的影响 | 第36页 |
| 2.3.2 冻融对河蚬多肽稳定性的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.3 pH对河蚬多肽稳定性的影响 | 第37页 |
| 2.3.4 金属离子对河蚬多肽稳定性的影响 | 第37页 |
| 2.4 河蚬多肽分离纯化 | 第37页 |
| 2.4.1 Sephadex G-15凝胶层析 | 第37页 |
| 2.4.2 大孔树脂分离纯化 | 第37页 |
| 3 结果分析 | 第37-45页 |
| 3.1 超滤分离河蚬多肽筛选结果 | 第37-38页 |
| 3.2 河蚬多肽稳定性试验结果分析 | 第38-42页 |
| 3.2.1 温度对河蚬多肽稳定性的影响分析 | 第39页 |
| 3.2.2 冻融对河蚬多肽稳定性的影响分析 | 第39-40页 |
| 3.2.3 pH对河蚬多肽稳定性的影响分析 | 第40页 |
| 3.2.4 金属离子对河蚬多肽稳定性的影响分析 | 第40-42页 |
| 3.3 低分子量河蚬多肽分离纯化结果分析 | 第42-45页 |
| 3.3.1 凝胶层析结果分析 | 第42-44页 |
| 3.3.2 大孔吸附结果分析 | 第44-45页 |
| 4 讨论 | 第45-46页 |
| 第四章 低分子量河蚬多肽对急性化学性肝损伤的保护作用 | 第46-55页 |
| 1 材料与设备 | 第46-47页 |
| 1.1 实验原材料 | 第46页 |
| 1.2 主要试剂 | 第46页 |
| 1.3 主要实验仪器设备 | 第46-47页 |
| 2 实验方法 | 第47-48页 |
| 2.1 实验动物模型建立 | 第47页 |
| 2.2 相关指标测定 | 第47-48页 |
| 2.2.1 脏器指数测定 | 第47页 |
| 2.2.2 血清指标测定 | 第47页 |
| 2.2.3 肝组织匀浆指标测定 | 第47-48页 |
| 2.2.4 肝脏病理组织学检查 | 第48页 |
| 2.3 试验数据统计学分析 | 第48页 |
| 3 结果分析 | 第48-54页 |
| 3.1 小鼠体指标检测结果 | 第48-49页 |
| 3.2 小鼠血清指标检测结果 | 第49-50页 |
| 3.3 小鼠肝组织匀浆指标检测结果 | 第50页 |
| 3.4 小鼠刚脏病理组织学切片结果分析 | 第50-54页 |
| 4 讨论 | 第54-55页 |
| 本文结论与展望 | 第55-56页 |
| 1 结论 | 第55页 |
| 2 展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 附录 | 第63-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第68-69页 |