| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第11-20页 |
| 1.1 CYP2J亚族酶的功能 | 第12页 |
| 1.2 CYP2J在物质代谢中的作用 | 第12-13页 |
| 1.2.1 CYP2J在内源性物质代谢中的作用 | 第12-13页 |
| 1.3 CYP2J亚族各型的基因与表达特征及其代谢活性 | 第13-15页 |
| 1.3.1 CYP2J1 | 第13页 |
| 1.3.2 CYP2J2 | 第13页 |
| 1.3.3 CYP2J3 | 第13页 |
| 1.3.4 CYP2J4 | 第13页 |
| 1.3.5 CYP2J5 | 第13-14页 |
| 1.3.6 CYP2J6 | 第14页 |
| 1.3.7 CYP2J8 | 第14页 |
| 1.3.8 CYP2J9 | 第14页 |
| 1.3.9 CYP2J10 | 第14页 |
| 1.3.10 CYP2J11、CYP2J12、CYP2J13和CYP2J16 | 第14页 |
| 1.3.11 CYP2J34 | 第14-15页 |
| 1.4 CYP2J酶及其参与产生的代谢产物生物活性 | 第15-17页 |
| 1.4.1 AA及其代谢产物的功能 | 第15页 |
| 1.4.2 促进生长发育的功能 | 第15页 |
| 1.4.3 在心血管系统疾病中的功能 | 第15-16页 |
| 1.4.4 在肾脏中的作用 | 第16页 |
| 1.4.5 EETs与糖尿病 | 第16页 |
| 1.4.6 EETs在缺血再灌注损伤中的作用 | 第16-17页 |
| 1.4.7 EETs在呼吸道疾病中的作用 | 第17页 |
| 1.4.8 其他作用 | 第17页 |
| 1.5 实时荧光定量PCR | 第17-18页 |
| 1.5.1 ReaI Time qPCR的原理 | 第17页 |
| 1.5.2 ReaI Time qPCR类型及特点 | 第17-18页 |
| 1.5.3 ReaI Time qPCR的数据分析方法 | 第18页 |
| 1.6 本实验的研究目的和意义 | 第18-20页 |
| 2 实验材料与方法 | 第20-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.2 主要实验试剂 | 第20页 |
| 2.3 主要实验仪器 | 第20页 |
| 2.4 琼脂糖凝胶的配置 | 第20-21页 |
| 2.4.1 1×TAE缓冲液的配制方法 | 第20-21页 |
| 2.4.2 制备步骤 | 第21页 |
| 2.5 总RNA的提取 | 第21页 |
| 2.5.1 硅胶膜离心吸附柱法 | 第21页 |
| 2.6 总RNA检验 | 第21-22页 |
| 2.7 反转录 | 第22页 |
| 2.8 ReaI Time qPCR引物设计 | 第22-23页 |
| 2.9 引物及模板的验证 | 第23-24页 |
| 2.10 ReaI Time qPCR相对定量检测 | 第24-25页 |
| 3 实验结果 | 第25-34页 |
| 3.1 RNA质量与完整性检测 | 第25页 |
| 3.2 引物及模板的初步验证 | 第25-26页 |
| 3.3 ReaI Time qPCR相对定量检测结果 | 第26-31页 |
| 3.3.1 熔解曲线与扩增曲线 | 第26-28页 |
| 3.3.2 CYP2J基因的mRNA表达量 | 第28-31页 |
| 3.4 CYP2J基因mRNA表达量柱状图比较分析 | 第31-34页 |
| 3.4.1 双峰驼CYP2J mRNA表达量 | 第31页 |
| 3.4.2 蒙古牛CYP2J mRNA表达量 | 第31-32页 |
| 3.4.3 CYP2J mRNA表达量在双峰驼与蒙古牛中的差异性分析 | 第32-34页 |
| 4 讨论 | 第34-35页 |
| 5 结论 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-42页 |
| 作者简介 | 第42页 |
