| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 人工细胞的研究进展 | 第20-39页 |
| 1.1 细胞传递 | 第20-21页 |
| 1.2 乳化液膜 | 第21-26页 |
| 1.2.1 多重乳液 | 第22-24页 |
| 1.2.2 W_1/O/W_2多重乳液中的水传递 | 第24-25页 |
| 1.2.3 乳液在生物医学中的应用 | 第25页 |
| 1.2.4 肝性脑病 | 第25-26页 |
| 1.3 巨型脂质体 | 第26-37页 |
| 1.3.1 巨型脂质体的制备 | 第27-29页 |
| 1.3.2 Ca~(2+)泵SERCA蛋白 | 第29-32页 |
| 1.3.3 膜蛋白在磷脂膜中的嵌入 | 第32-33页 |
| 1.3.4 磷脂膜融合 | 第33-36页 |
| 1.3.5 脂质体之间水化力分析 | 第36-37页 |
| 1.4 本文研究思路与内容 | 第37-39页 |
| 2 乳液NH_3被动传递及吸附肠道氨研究 | 第39-57页 |
| 2.1 实验材料和方法 | 第39-43页 |
| 2.1.1 实验材料和设备 | 第39-40页 |
| 2.1.2 W_1/O/W_2多重乳液的制备 | 第40-41页 |
| 2.1.3 NH_3在水和石蜡中分配系数的测定 | 第41页 |
| 2.1.4 柠檬酸的包埋率和释放 | 第41-42页 |
| 2.1.5 油相中含水量测定 | 第42页 |
| 2.1.6 DSC扫描 | 第42页 |
| 2.1.7 W_1/O/W_2多重乳液氨传递 | 第42页 |
| 2.1.8 动物实验 | 第42-43页 |
| 2.2 W_1/O/W_2多重乳液的制备 | 第43-45页 |
| 2.3 W_1/O/W_2多重乳液中的水传递 | 第45-49页 |
| 2.4 多重乳液氨被动传递 | 第49-56页 |
| 2.4.1 多重乳液氨传递机理 | 第49-52页 |
| 2.4.2 多重乳液体外氨传递研究 | 第52-54页 |
| 2.4.3 动物实验 | 第54-56页 |
| 2.5 本章小结 | 第56-57页 |
| 3 巨型脂质体的制备及对Fluo-5f的包埋 | 第57-71页 |
| 3.1 实验材料和方法 | 第57-59页 |
| 3.1.1 实验材料和设备 | 第57-58页 |
| 3.1.2 纳米脂质体的制备 | 第58页 |
| 3.1.3 电形成法制备巨型脂质体 | 第58-59页 |
| 3.1.4 巨型脂质体对Fluo-5f的包埋 | 第59页 |
| 3.2 巨型脂质体的制备 | 第59-65页 |
| 3.2.1 电形成法制备巨型脂质体 | 第59-61页 |
| 3.2.2 巨型脂质体制备条件的优化 | 第61-65页 |
| 3.3 曲拉通x-100对磷脂双分子膜透过性影响 | 第65-68页 |
| 3.4 巨型脂质体对Fluo-5f的包埋 | 第68-69页 |
| 3.5 本章小结 | 第69-71页 |
| 4 Ca~(2+)泵SERCA蛋白的提取及荧光标记 | 第71-89页 |
| 4.1 实验材料和方法 | 第71-77页 |
| 4.1.1 实验材料和设备 | 第71-73页 |
| 4.1.2 SERCA蛋白的提取 | 第73-74页 |
| 4.1.3 SERCA蛋白FITC荧光探针标记 | 第74-75页 |
| 4.1.4 SERCA蛋白浓度及FITC残留分析 | 第75-76页 |
| 4.1.5 游离FITC的去除 | 第76-77页 |
| 4.1.6 标记程度计算 | 第77页 |
| 4.2 SERCA蛋白的提取 | 第77-81页 |
| 4.3 FITC荧光标记SERCA蛋白 | 第81-82页 |
| 4.3.1 电泳测量蛋白标记程度 | 第81-82页 |
| 4.3.2 FITC标记反应条件的优化 | 第82页 |
| 4.4 溶液中SERCA蛋白标记后游离FITC的去除 | 第82-86页 |
| 4.4.1 10kD截留分子量的膜过滤 | 第83页 |
| 4.4.2 3.5kD截留分子量的膜透析 | 第83-85页 |
| 4.4.3 离心脱盐树脂分离柱 | 第85-86页 |
| 4.5 纳米脂质体中SERCA标记后游离FITC的去除 | 第86-88页 |
| 4.5.1 Bio beads SM-2吸附 | 第86-87页 |
| 4.5.2 超速离心法 | 第87-88页 |
| 4.6 本章小结 | 第88-89页 |
| 5 功能化巨型脂质体的构建和Ca~(2+)主动传递 | 第89-116页 |
| 5.1 实验材料和方法 | 第89-93页 |
| 5.1.1 实验材料和设备 | 第89-91页 |
| 5.1.2 SERCA蛋白在纳米脂质体中的嵌入 | 第91页 |
| 5.1.3 ATP水解法测量SERCA蛋白活性 | 第91页 |
| 5.1.4 纳米脂质体中的Ca~(2+)主动传递 | 第91-92页 |
| 5.1.5 SERCA蛋白在巨型脂质体磷脂双分子膜中的嵌入 | 第92页 |
| 5.1.6 巨型脂质体中的Ca~(2+)主动传递 | 第92-93页 |
| 5.2 SERCA蛋白在纳米脂质体磷脂膜中的嵌入 | 第93-96页 |
| 5.2.1 表面活性剂介导法 | 第93-95页 |
| 5.2.2 纳米脂质体中SERCA蛋白活性测试 | 第95-96页 |
| 5.3 含有SERCA蛋白的纳米脂质体制备巨型脂质体 | 第96-101页 |
| 5.3.1 SERCA蛋白在巨型脂质体磷脂膜中的嵌入 | 第96页 |
| 5.3.2 SERCA蛋白在纳米脂质体中嵌入机理分析 | 第96-99页 |
| 5.3.3 巨型脂质体中的Ca~(2+)主动传递 | 第99-101页 |
| 5.4 DOTM介导法嵌入SERCA蛋白 | 第101-102页 |
| 5.5 巨型脂质体和纳米脂质体融合法嵌入SERCA蛋白 | 第102-114页 |
| 5.5.1 巨型脂质体和纳米脂质体融合法 | 第102-107页 |
| 5.5.2 巨型脂质体和纳米脂质体融合机理分析 | 第107-109页 |
| 5.5.3 ATP水解法测定巨型脂质体中SERCA蛋白活性 | 第109-110页 |
| 5.5.4 巨型脂质体中的Ca~(2+)主动传递 | 第110-112页 |
| 5.5.5 毒胡萝卜素(TG)对SERCA蛋白功能的调控 | 第112-114页 |
| 5.6 本章小结 | 第114-116页 |
| 6 结论、创新点与展望 | 第116-119页 |
| 6.1 结论 | 第116-117页 |
| 6.2 创新点摘要 | 第117-118页 |
| 6.3 展望 | 第118-119页 |
| 参考文献 | 第119-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
| 作者简介 | 第130页 |
| 攻读博士学位期间科研项目及科研成果 | 第130页 |
