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猪源抗菌肽Cecropin P1的原核表达及抑菌活性检测

中文摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
缩略词表第8-13页
第一部分 文献综述第13-23页
    1 抗菌肽的研究进展第13-21页
        1.1 抗菌肽的概述第13-21页
            1.1.1 抗菌肽的分类第14页
            1.1.2 抗菌肽的理化性质第14-16页
            1.1.3 抗菌肽的作用机理第16-18页
            1.1.4 抗菌肽的基因工程研究第18-19页
            1.1.5 抗菌肽在畜牧业中的应用第19-20页
            1.1.6 面临的问题第20-21页
    2 猪源抗菌肽Cecropin P1第21-23页
        2.1 Cecropin P1的结构第21页
        2.2 Cecropin P1的抗菌机理第21-23页
第二部分 试验研究第23-71页
    第一章 抗菌肽Cecropin P1目的基因的人工合成第23-34页
        1 试验材料第23-25页
            1.1 菌株和载体第23页
            1.2 主要试剂第23-24页
            1.3 溶液配置第24页
            1.4 主要仪器第24-25页
        2 试验方法第25-31页
            2.1 CP1目的基因设计第25-26页
            2.2 引物设计第26页
            2.3 CP1目的基因的人工合成第26-27页
                2.3.1 初级延伸反应第26页
                2.3.2 次级延伸反应第26-27页
            2.4 目的基因的克隆及鉴定第27-31页
                2.4.1 CP1目的基因的回收第27页
                2.4.2 大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备第27-28页
                2.4.3 CP1目的基因与载体质粒的连接第28-29页
                2.4.4 重组质粒转化至宿主菌DH5α第29页
                2.4.5 重组质粒的鉴定第29-31页
        3 试验结果第31-32页
            3.1 CP1目的基因的人工合成第31页
            3.2 重组质粒的酶切鉴定第31-32页
            3.3 测序鉴定第32页
        4 讨论第32-34页
    第二章 重组表达质粒pCold TF-CP1的构建第34-44页
        1 试验材料第34-36页
            1.1 菌株和载体第34页
            1.2 主要试剂第34-35页
            1.3 溶液配制第35页
            1.4 主要仪器第35-36页
        2 试验方法第36-41页
            2.1 CP1目的基因的制备第36-37页
            2.2 原核表达载体pCold TF基因片段的制备第37页
            2.3 CP1目的基因与表达载体的连接第37-38页
            2.4 重组质粒转化至DH5α第38页
            2.5 重组质粒的鉴定第38-41页
                2.5.1 重组质粒抽提第38-39页
                2.5.2 菌落PCR鉴定第39-40页
                2.5.3 重组质粒的酶切鉴定第40-41页
                2.5.4 重组质粒的测序鉴定第41页
        3 试验结果第41-42页
            3.1 菌落PCR鉴定第41-42页
            3.2 酶切鉴定结果第42页
            3.3 测序鉴定结果第42页
        4 讨论第42-44页
    第三章 重组质粒工程菌的诱导表达第44-57页
        1 试验材料第44-47页
            1.1 菌株和质粒第44页
            1.2 主要试剂第44-45页
            1.3 溶液配制第45-46页
            1.4 主要仪器第46-47页
        2 试验方法第47-51页
            2.1 重组质粒工程菌的诱导表达第47-48页
                2.1.1 重组质粒工程菌的制备第47页
                2.2.2 重组表达工程菌的初步表达第47-48页
                2.2.3 SDS-PAGE电泳检测第48页
            2.2 重组表达蛋白的可溶性检测第48-49页
            2.3 诱导表达的时间选择第49页
            2.4 诱导剂的浓度选择第49页
            2.5 重组表达蛋白的免疫印迹分析(Western-blot)第49-51页
                2.5.1 蛋白质样品制备第49页
                2.5.2 SDS-PAGE电泳第49-50页
                2.5.3 Western-blot杂交检测第50-51页
        3 试验结果第51-55页
            3.1 重组质粒工程菌的初步表达第51-52页
            3.2 重组表达蛋白的可溶性鉴定第52页
            3.3 诱导表达时间的优化第52-53页
            3.4 IPTG工作浓度优化第53-54页
            3.5 重组表达蛋白免疫印迹分析第54-55页
        4 讨论第55-57页
    第四章 抗菌肽CP1的释放及抑菌活性检测第57-71页
        1 试验材料第57-59页
            1.1 菌株第57页
            1.2 主要试剂第57-58页
            1.3 溶液配制第58页
            1.4 主要仪器第58-59页
        2 试验方法第59-61页
            2.1 融合蛋白的处理第59-60页
                2.1.1 融合蛋白纯化第59-60页
                2.1.2 融合蛋白除盐浓缩第60页
            2.2 融合蛋白rCP1的切割第60-61页
            2.3 Tricine-SDS-PAGE第61页
            2.4 酶切产物的活性检测第61页
            2.5 酶切产物的分析第61页
        3 试验结果第61-69页
            3.1 融合蛋白rCP1的纯化第61-62页
            3.2 融合蛋白的浓缩第62-63页
            3.3 融合蛋白的切割第63-64页
            3.4 酶切产物的活性检测第64-66页
            3.5 酶切产物的分析第66-69页
        4 讨论第69-71页
总结第71-72页
参考文献第72-79页
致谢第79-80页
攻读学位期间发表的学术论文第80页

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