| 前言 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-15页 |
| 主要英文词缩写表 | 第15-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-18页 |
| 第二章 文献综述 | 第18-28页 |
| 1 肝癌的国内外研究现状 | 第18-20页 |
| 2 除草剂阿特拉津的国内外研究进展 | 第20-22页 |
| 3 细胞侵袭和迁移 | 第22-24页 |
| 4 STAT3 与肿瘤细胞增殖和凋亡的关系 | 第24-28页 |
| 第三章 研究内容 | 第28-44页 |
| ·实验材料 | 第28-31页 |
| ·实验用细胞、动物 | 第28页 |
| ·主要仪器与设备 | 第28-29页 |
| ·主要试剂 | 第29页 |
| ·主要试剂的配制方法 | 第29-31页 |
| ·实验方法-体外实验研究 | 第31-38页 |
| ·细胞培养 | 第31-32页 |
| ·MTT 法检测 ATR 对 H22 细胞增殖能力的影响 | 第32页 |
| ·流式细胞术检测 ATR 暴露下 H22 细胞的周期变化 | 第32-33页 |
| ·流式细胞术检测 H22 细胞凋亡 | 第33页 |
| ·Real-time PCR 检测增殖和凋亡相关基因的转录 | 第33-36页 |
| ·western blot 方法检测 ATR 暴露对 H22 细胞蛋白表达的影响 | 第36-38页 |
| ·实验方法-体内实验研究 | 第38-43页 |
| ·肝原位移植瘤模型的建立 | 第38-39页 |
| ·HE 染色 | 第39-40页 |
| ·免疫组化染色方法检测肿瘤组织中增殖凋亡相关蛋白的表达 | 第40-41页 |
| ·Real time PCR 方法检测肿瘤组织中 mRNA 的转录情况 | 第41-43页 |
| ·Western blot 方法检测蛋白表达 | 第43页 |
| ·数据统计 | 第43-44页 |
| 第四章 实验结果 | 第44-62页 |
| ·ATR 暴露对 H22 细胞的作用——体外实验 | 第44-52页 |
| ·ATR 暴露后 H22 细胞的增殖能力增强 | 第44页 |
| ·ATR 暴露后 H22 细胞周期和凋亡的变化 | 第44-47页 |
| ·ATR 暴露对 H22 细胞增殖、凋亡、侵袭和迁移相关基因及STAT3 转录水平的影响 | 第47-48页 |
| ·ATR 暴露后 H22 细胞增殖、凋亡、侵袭和迁移相关蛋白及STAT3 信号通路及蛋白表达的影响 | 第48-52页 |
| ·ATR 对 C57BL/6 小鼠肝脏原位移植瘤的作用研究-体内实验 | 第52-62页 |
| ·成功构建肝脏原位移植瘤 | 第52-53页 |
| ·ATR 灌胃处理后小鼠肝脏原位移植瘤发生转移并且瘤重增加 | 第53-54页 |
| ·ATR 处理后小鼠肝脏原位移植瘤内增殖、凋亡、侵袭、转移和 STAT3 信号通路基因的转录变化 | 第54-55页 |
| ·ATR 处理后小鼠肝脏原位移植瘤内增殖、凋亡、侵袭、转移和 STAT3 信号通路蛋白的表达变化 | 第55-57页 |
| ·ATR 灌胃处理后各组小鼠肿瘤组织形态学变化 | 第57页 |
| ·ATR 暴露后免疫组化分析各组肿瘤细胞中的蛋白表达 | 第57-62页 |
| 第五章 讨论 | 第62-66页 |
| 第六章 结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-94页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第94-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
