| 目录 | 第1-8页 |
| 第一部分 激酶活性的分子生物学方法比较 | 第8-85页 |
| 缩写词 | 第8-9页 |
| 论文摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-31页 |
| 第一节 激酶与人类疾病 | 第11-18页 |
| 第二节 激酶活性的生化检测方法 | 第18-27页 |
| 第三节 激酶的选择以及检测条件的确定 | 第27-31页 |
| 第二章 激酶浓度的优化、确定以及比较 | 第31-41页 |
| 第一节 在ADP-Glo上的激酶浓度的优化 | 第31-34页 |
| 第二节 在Htfr上的激酶浓度的优化 | 第34-36页 |
| 第三节 在Mobility Shift上的激酶浓度的优化 | 第36-37页 |
| 第四节 在Z-lyte上的激酶浓度的优化 | 第37-39页 |
| 第五节 几种方法的酶使用的量的比较 | 第39-41页 |
| 第三章 激酶ATP表观Km的测定及比较 | 第41-48页 |
| 第一节 在ADP-Glo上的ATP表观Km的测定 | 第41-42页 |
| 第二节 在Htfr上的ATP表观Km的测定 | 第42-43页 |
| 第三节 在Mobility Shift上的ATP表观Km的测定 | 第43-44页 |
| 第四节 在Z-lyte上的ATP表观Km的测定 | 第44-45页 |
| 第五节 实验与结果讨论 | 第45-48页 |
| 第四章 激酶多肽底物浓度的确定及比较 | 第48-55页 |
| 第一节 几种方法的多肽底物Km测定的讨论 | 第48-49页 |
| 第二节 ADP-Glo的多肽底物Km测定的讨论 | 第49-51页 |
| 第三节 Htfr的多肽底物Km测定的讨论 | 第51-53页 |
| 第四节 Mobility Shift以及Z-lyte的多肽底物Km测定的讨论 | 第53-54页 |
| 第五节 几种方法的多肽底物使用量的比较 | 第54-55页 |
| 第五章 激酶抑制剂IC50的测定以及比较 | 第55-69页 |
| 第一节 数据质量控制—Z factor的测定和比较 | 第55-57页 |
| 第二节 使用激酶SYK进行均一性测试 | 第57-59页 |
| 第三节 5种方法IC50的测定以及数据比较 | 第59-69页 |
| 第六章 结论 | 第69-72页 |
| 附录 | 第72-76页 |
| 附录一 Envision的具体设置 | 第72-76页 |
| 主要参考文献 | 第76-85页 |
| 第二部分 索拉菲尼分子机理的研究 | 第85-168页 |
| 缩写词 | 第85-86页 |
| 论文摘要 | 第86页 |
| Abstract | 第86-88页 |
| 第一章 前言 | 第88-104页 |
| 第一节 索拉菲尼的研究进展 | 第88-94页 |
| 第二节 癌症与肿瘤转移 | 第94-96页 |
| 第三节 索拉菲尼的临床研究 | 第96-102页 |
| 第四节 研究目的与内容 | 第102-104页 |
| 第二章 索拉菲尼的激酶酶谱蹄选 | 第104-118页 |
| 第一节 激酶酶谱检测方法的建立 | 第104-111页 |
| 第二节 索拉菲尼的激酶酶谱蹄选 | 第111-114页 |
| 第三节 相关激酶的索拉菲尼IC50检测 | 第114-115页 |
| 第四节 索拉菲尼针对几个主要IE点的机制研究 | 第115-118页 |
| 第三章 索拉菲尼对肿瘤细胞增殖的抑制试验 | 第118-124页 |
| 第四章 索拉菲尼的Transwell实验 | 第124-130页 |
| 第五章 索拉菲尼对细胞RNA水平的调控 | 第130-141页 |
| 第一节 使用索拉菲尼对细胞进行处理 | 第130-131页 |
| 第二节 抽提RNA及进行定量PCR | 第131-136页 |
| 第三节 数据整理及分析 | 第136-141页 |
| 第六章 索拉菲尼对细胞蛋白水平的调控 | 第141-152页 |
| 第一节 使用索拉菲尼对细胞进行处理 | 第141-142页 |
| 第二节 蛋白印迹实验和检测 | 第142-147页 |
| 第三节 蛋白印迹数据分析 | 第147-152页 |
| 第七章 结论 | 第152-154页 |
| 附录 | 第154-158页 |
| 附录一 Envision的具体设置 | 第154-157页 |
| 附录二 作者发表文献 | 第157-158页 |
| 主要参考文献 | 第158-168页 |
| 致谢 | 第168页 |
