| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 第一章 猕猴桃高频再生体系的建立及农杆菌介导的遗传转化 | 第10-37页 |
| 一、文献综述 | 第10-26页 |
| 1 猕猴桃的组织培养 | 第10-16页 |
| ·培养基 | 第11-13页 |
| ·培养条件 | 第13-14页 |
| ·猕猴桃组织培养进展 | 第14-16页 |
| ·花药培养 | 第14页 |
| ·离体胚培养 | 第14-15页 |
| ·胚乳培养 | 第15页 |
| ·子叶、叶、茎段等器官培养 | 第15页 |
| ·原生质体培养及融合 | 第15-16页 |
| 2 猕猴桃遗传转化研究进展 | 第16-18页 |
| 3 Na~+/H~+逆向转运蛋白与植物的抗盐性 | 第18-25页 |
| ·我国的土壤盐渍土化状况 | 第18-19页 |
| ·Na~+/H~+逆向转运蛋白 | 第19-21页 |
| ·质膜Na~+/H~+逆向转运蛋白 | 第19-20页 |
| ·液泡膜Na~+/H~+逆向转运蛋白 | 第20-21页 |
| ·拟南芥Na~+/H~+逆向转运蛋白基因(AtNHXl) | 第21-25页 |
| ·AtNHXl的基本结构 | 第21-22页 |
| ·AtNHXl的功能研究 | 第22-23页 |
| ·AtNHXl的作用机制 | 第23页 |
| ·AtNHXl C末端的调节作用 | 第23-24页 |
| ·AtNHXl的调控机制 | 第24-25页 |
| ·AtNHXl的研究意义及展望 | 第25页 |
| 4 选题的目的和意义 | 第25-26页 |
| 二、实验部分 | 第26-37页 |
| 1 实验仪器 | 第26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-31页 |
| ·材料和培养条件 | 第26-27页 |
| ·愈伤组织的诱导及芽的分化 | 第27页 |
| ·从无菌苗直接获得再生芽 | 第27页 |
| ·猕猴桃的生根实验 | 第27-28页 |
| ·农杆菌介导的猕猴桃的遗传转化 | 第28-31页 |
| ·农杆菌菌株及所含质粒 | 第28页 |
| ·细菌培养基 | 第28页 |
| ·农杆菌转化及植株再生 | 第28-29页 |
| ·转化植株的PCR分析 | 第29-31页 |
| ·DNA的提取 | 第29-30页 |
| ·PCR分析 | 第30-31页 |
| 3 结果分析 | 第31-34页 |
| ·愈伤组织和芽的诱导 | 第31-33页 |
| ·无菌苗直接再生从生芽 | 第33页 |
| ·植物生长物质对生根的影响 | 第33-34页 |
| ·猕猴桃对卡那霉素的敏感性试验 | 第34页 |
| ·转化植株的PCR结果 | 第34页 |
| 4 讨论 | 第34-37页 |
| 第二章 玉米Na~+/H~+逆向转运蛋白基因的电子克隆 | 第37-49页 |
| 一、文献综述 | 第37-40页 |
| 1 基因的电子克隆 | 第37-38页 |
| 2 电子克隆中的一些常见问题和对策 | 第38-39页 |
| 3 电子克隆技术的展望 | 第39-40页 |
| 4 选题的目的和意义 | 第40页 |
| 二、实验部分 | 第40-49页 |
| 1 实验材料 | 第40页 |
| 2 ZmNHX基因的电子拼接与分析 | 第40-41页 |
| 3 玉米总RNA的提取及RT-PCR | 第41-43页 |
| ·总RNA的提取 | 第41-42页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第42-43页 |
| ·RT-PCR | 第43页 |
| 4 结果分析 | 第43-47页 |
| ·ZmNHX基因序列与分析 | 第43-45页 |
| ·ZmNHX基因cDNA序列 | 第43-45页 |
| ·氨基酸序列 | 第45页 |
| ·ZmNHX基因序列检索 | 第45-47页 |
| ·核苷酸序列BLAST检索结果 | 第45-46页 |
| ·氨基酸序列BLAST检索结果 | 第46-47页 |
| ·玉米总RNA琼脂糖凝胶电泳结果 | 第47页 |
| 5 讨论 | 第47-49页 |
| 附图 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 硕士期间发表的文章 | 第59页 |
