| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-29页 |
| ·生物传感器概述 | 第11-14页 |
| ·生物传感器的发展历程 | 第11-14页 |
| ·生物传感器的原理 | 第14-18页 |
| ·生物传感器的构造及原理 | 第14-15页 |
| ·生物传感器的决定因素 | 第15-18页 |
| ·固定酶的方法 | 第15-16页 |
| ·固定酶的材料 | 第16-18页 |
| ·无机纳米半导体材料 | 第18-24页 |
| ·纳米材料 | 第18页 |
| ·半导体材料 | 第18-21页 |
| ·半导体氧化铋性质 | 第18-19页 |
| ·氧化铋的用途 | 第19-21页 |
| ·氧化铋在生物传感器中的应用 | 第21-24页 |
| ·氧化铋用于固定血红蛋白 | 第21-22页 |
| ·氧化铋用于构建多酚氧化酶传感器 | 第22-23页 |
| ·氧化铋制备葡萄糖生物传感器 | 第23-24页 |
| ·展望 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-29页 |
| 第二章 基于无机半导体氧化铋薄膜中血红蛋白的直接电化学 | 第29-48页 |
| ·引言 | 第29-30页 |
| ·实验部分 | 第30-31页 |
| ·试剂和药品 | 第30页 |
| ·膜电极的制备 | 第30-31页 |
| ·测量方法和仪器 | 第31页 |
| ·结果与讨论 | 第31-45页 |
| ·红外光谱 | 第31-32页 |
| ·紫外光谱 | 第32-33页 |
| ·血红蛋白在氧化铋膜中的直接电化学 | 第33-35页 |
| ·不同扫描速率对酶电极的影响 | 第35-37页 |
| ·溶液pH 对血红蛋白直接电子传递过程的影响 | 第37-39页 |
| ·氧化铋膜生物电极电催化作用 | 第39-45页 |
| ·氧化铋膜生物电极对氧气的电催化作用 | 第39-40页 |
| ·氧化铋膜生物电极对双氧水的电催化作用 | 第40-41页 |
| ·氧化铋膜生物电极对三氯乙酸的电催化作用 | 第41-43页 |
| ·氧化铋膜生物电极对亚硝酸盐的电催化作用 | 第43-45页 |
| ·结论 | 第45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 第三章 基于无机半导体氧化铋薄膜的酚类安培传感器 | 第48-67页 |
| ·引言 | 第48-49页 |
| ·实验部分 | 第49-50页 |
| ·试剂 | 第49页 |
| ·氧化铋样品的制备 | 第49页 |
| ·试验装置 | 第49-50页 |
| ·酶电极制备 | 第50页 |
| ·生物传感器响应电流测定原理 | 第50-51页 |
| ·结果和讨论 | 第51-57页 |
| ·X-射线粉末衍射 | 第51-52页 |
| ·红外光谱 | 第52-53页 |
| ·合成BiO_x 和PPO/BiO_x 薄膜的形态 | 第53-54页 |
| ·氧化铋改性薄膜的渗透性 | 第54-57页 |
| ·传感器构筑的优化 | 第57-59页 |
| ·酶固定化的变量优化 | 第57-58页 |
| ·PPO/BiO_X 复合膜厚度对传感器性能的影响 | 第58-59页 |
| ·优化检测试验变量 | 第59-60页 |
| ·酶电极响应特性 | 第60-62页 |
| ·电极的操作稳定性 | 第62-63页 |
| ·真实水样品分析 | 第63-64页 |
| ·结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
| 第四章 基于无机半导体氧化铋的葡萄糖生物传感器 | 第67-85页 |
| ·引言 | 第67-68页 |
| ·实验部分 | 第68-70页 |
| ·试剂 | 第68页 |
| ·仪器 | 第68页 |
| ·其它测试 | 第68-69页 |
| ·酶电极的制备 | 第69页 |
| ·响应电流的测定 | 第69-70页 |
| ·结果与讨论 | 第70-82页 |
| ·结论 | 第82页 |
| 参考文献 | 第82-85页 |
| 第五章 结论 | 第85-86页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
