摘要 | 第6-7页 |
abstract | 第7页 |
英文缩略表 | 第11-12页 |
第一章 引言 | 第12-23页 |
1.1 鹿茸发生 | 第12-15页 |
1.1.1 鹿茸发生概述 | 第12-13页 |
1.1.2 鹿茸发生组织基础 | 第13-14页 |
1.1.3 鹿茸发生组织学过程 | 第14-15页 |
1.2 鹿茸干细胞 | 第15-18页 |
1.2.1 AP组织来源 | 第15-16页 |
1.2.2 AP细胞干性 | 第16-17页 |
1.2.3 AP细胞多潜能性 | 第17页 |
1.2.4 干细胞微环境 | 第17-18页 |
1.3 鹿茸发生的调控 | 第18-20页 |
1.3.1 雄性激素经典调控过程 | 第18页 |
1.3.2 雄性激素调控鹿茸发生 | 第18-19页 |
1.3.3 生长因子调控 | 第19-20页 |
1.4 鹿茸再生过程与雄性激素调控 | 第20-22页 |
1.4.1 鹿茸再生 | 第20-21页 |
1.4.2 雄性激素与鹿茸再生 | 第21-22页 |
1.5 本研究目的和意义 | 第22-23页 |
第二章 动物模型的建立 | 第23-32页 |
2.1 材料方法 | 第23-27页 |
2.1.1 试验动物 | 第23页 |
2.1.2 试验器材 | 第23-24页 |
2.1.3 试验试剂 | 第24-25页 |
2.1.4 动物处理及组织采集 | 第25-26页 |
2.1.5 石蜡切片及HE染色 | 第26-27页 |
2.2 结果 | 第27-30页 |
2.2.1 角柄生长测量 | 第27-28页 |
2.2.2 雄性激素浓度水平变化 | 第28-29页 |
2.2.3 HE染色结果 | 第29-30页 |
2.3 讨论 | 第30-31页 |
2.4 本章小结 | 第31-32页 |
第三章 蛋白组学分析雄性激素调控鹿茸发生机制 | 第32-57页 |
3.1 材料与方法 | 第32-41页 |
3.1.1 试验材料 | 第32页 |
3.1.2 试验仪器 | 第32-33页 |
3.1.3 试验试剂 | 第33页 |
3.1.4 试验步骤 | 第33-41页 |
3.2 结果与分析 | 第41-53页 |
3.2.1 条件优化结果 | 第41-43页 |
3.2.2 待鉴定蛋白筛选 | 第43-46页 |
3.2.3 聚类分析 | 第46-47页 |
3.2.4 DEPs质谱鉴定 | 第47-48页 |
3.2.5 DEPs生物信息学分析 | 第48-52页 |
3.2.6 Q-PCR验证 | 第52页 |
3.2.7 western-blot验证 | 第52-53页 |
3.3 讨论 | 第53-56页 |
3.4 本章小结 | 第56-57页 |
第四章 鹿茸发生和再生差异蛋白组学的分析 | 第57-66页 |
4.1 材料和方法 | 第57-59页 |
4.1.1 试验动物 | 第57页 |
4.1.2 试验器材 | 第57-58页 |
4.1.3 主要试剂 | 第58页 |
4.1.4 样本采集 | 第58-59页 |
4.1.5 差异蛋白点生物信息学分析 | 第59页 |
4.2 结果与分析 | 第59-64页 |
4.2.1 血清睾酮浓度测定 | 第59-60页 |
4.2.2 差异蛋白筛选结果比较 | 第60-61页 |
4.2.3 GO功能聚类分析与通路富集分析结果比较 | 第61-62页 |
4.2.4 DEPs蛋白互作分析 | 第62-64页 |
4.3 讨论 | 第64-65页 |
4.4 本章小结 | 第65-66页 |
第五章 雄性激素对体外培养AP组织的细胞增殖影响 | 第66-73页 |
5.1 材料与方法 | 第66-70页 |
5.1.1 试验动物 | 第66页 |
5.1.2 试验器材 | 第66-67页 |
5.1.3 试验试剂 | 第67页 |
5.1.4 组织采集 | 第67-68页 |
5.1.5 AP组织处理及培养 | 第68页 |
5.1.6 冰冻切片与染色 | 第68-69页 |
5.1.7 KI67 染色 | 第69-70页 |
5.2 结果与分析 | 第70-71页 |
5.2.1 EdU增殖检测实验结果 | 第70-71页 |
5.2.2 KI67 增殖检测实验结果 | 第71页 |
5.3 讨论 | 第71-72页 |
5.4 结论 | 第72-73页 |
第六章 全文结论 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-85页 |
附录 | 第85-91页 |
致谢 | 第91-92页 |
作者简历 | 第92页 |