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外源纤维素酶和4-香豆酸辅酶A连接酶影响木质纤维素结构与酶解分子机理的研究

摘要第11-13页
Abstract第13-14页
缩略词表 Abbreviations第15-17页
1.前言第17-54页
    1.1 生物质能第17-19页
        1.1.1 生物质能概述第17页
        1.1.2 生物质能的发展前景第17-19页
    1.2 植物细胞壁结构第19-27页
        1.2.1 植物细胞壁的组成第19-20页
        1.2.2 纤维素结构第20-22页
        1.2.3 半纤维素结构第22-25页
        1.2.4 木质素结构第25-27页
    1.3 木质素合成第27-33页
        1.3.1 木质素单体的生物合成第27-32页
        1.3.2 木质素的聚合第32-33页
    1.4 木质纤维素生物质的遗传改良第33-46页
        1.4.1 纤维素的遗传改良第34-42页
        1.4.2 木质素的遗传改良第42-46页
    1.5 生物质的预处理与酶解第46-50页
        1.5.1 生物质的预处理第46-48页
        1.5.2 生物质的酶解第48-50页
    1.6 表面活性剂第50-52页
        1.6.1 Tween-80第51-52页
        1.6.2 PEG4000第52页
    1.7 生物质乙醇发酵第52-53页
    1.8 本研究的目的和意义第53-54页
第一章 在水稻中超表达外源纤维素酶的研究第54-155页
    2.材料与方法第59-101页
        2.1 实验材料第59-62页
            2.1.1 水稻材料第59页
            2.1.2 菌株和载体第59-61页
            2.1.3 实验主要仪器及试剂第61-62页
        2.2 实验方法第62-101页
            2.2.1 总RNA的提取第62-64页
            2.2.2 载体构建第64-73页
            2.2.3 水稻成熟胚愈伤组织的诱导、分化、生根及移栽方法第73-74页
            2.2.4 转基因苗阳性苗PCR鉴定第74-75页
            2.2.5 基因表达分析第75-76页
            2.2.6 纤维素酶活性分析第76-78页
            2.2.7 抗原制备与检测第78-82页
            2.2.8 抗原的纯化第82-83页
            2.2.9 抗体的制备第83页
            2.2.10 抗体的纯化第83-84页
            2.2.11 Westernblotting第84-85页
            2.2.12 亚细胞定位观察第85-87页
            2.2.13 透射电镜观察第87页
            2.2.14 切片观察第87页
            2.2.15 细胞壁多糖成分的测定第87-88页
            2.2.16 晶体纤维素的提取与测定第88-89页
            2.2.17 比色法测定己糖和戊糖第89页
            2.2.18 木质素含量第89-90页
            2.2.19 气相色谱法(GC-MS)测定半纤维素单糖组成第90-91页
            2.2.20 液相色谱法(HPLC)测定木质素单体组成第91-92页
            2.2.21 纤维素聚合度的测定第92-93页
            2.2.22 纤维素结晶度的测定第93-94页
            2.2.23 表面活性剂的添加及酶解第94页
            2.2.24 生物质稀酸预处理及酶解第94-95页
            2.2.25 生物质稀碱预处理及酶解第95页
            2.2.26 Tween-80提取粗细胞壁上清液中蛋白质含量的测定第95-96页
            2.2.27 粗细胞壁孔隙度的测定第96-99页
            2.2.28 扫描电镜观察第99页
            2.2.29 分步糖化发酵第99页
            2.2.30 乙醇含量的测定第99-100页
            2.2.31 数据统计分析第100-101页
    3.结果分析第101-150页
        3.1 纤维素内切酶(EGⅡ)在质外体中的表达第101-115页
            3.1.1 EGⅡ抗体的制备第101-103页
            3.1.2 基因表达分析第103-104页
            3.1.3 EGⅡ的纤维素酶活性分析第104-105页
            3.1.4 农艺性状观察第105-106页
            3.1.5 对细胞壁组成和结构的影响第106-110页
            3.1.6 预处理酶解效率和乙醇产率第110-112页
            3.1.7 Tween-80处理后细胞壁结构的变化第112-114页
            3.1.8 小结第114-115页
        3.2 纤维素外切酶(CBHⅠ)在质外体中的表达第115-126页
            3.2.1 基因表达分析第115-117页
            3.2.2 田间性状考察第117-118页
            3.2.3 对细胞壁组成和结构的影响第118-120页
            3.2.4 预处理酶解效率第120-123页
            3.2.5 Tween-80处理后细胞壁结构的变化第123-124页
            3.2.6 小结第124-126页
        3.3 葡萄糖苷酶(BGLⅠ)在质外体中的表达第126-140页
            3.3.1 基因表达分析第126-127页
            3.3.2 酶活分析第127-128页
            3.3.3 酸碱预处理酶解效率第128-130页
            3.3.4 乙醇产率第130-133页
            3.3.5 Tween-80处理后细胞壁结构的变化第133-134页
            3.3.6 农艺性状考察第134-135页
            3.3.7 对细胞壁组成和结构的影响第135-138页
            3.3.8 小结第138-140页
        3.4 在水稻叶绿体中的表达EGⅡ,CBHI和BGLI第140-150页
            3.4.1 基因表达分析第140-141页
            3.4.2 亚细胞定位第141页
            3.4.3 农艺性状考察第141-143页
            3.4.4 对细胞壁组成和结构的影响第143-147页
            3.4.5 直接酶解效率第147-148页
            3.4.6 乙醇产率第148-149页
            3.4.7 小结第149-150页
    4.讨论第150-154页
        4.1 特异性启动子rbcS的选择第150-151页
        4.2 在水稻质外体中超表达纤维素酶基因对细胞壁的改良第151-153页
        4.3 在水稻中超表达三种纤维素酶基因的比较第153页
        4.4 纤维素酶转基因水稻秸秆产醇的条件优化与后续工作第153-154页
    5.论文数据说明第154-155页
第二章 内源Os4CL4基因抑制对水稻木质素组成和生物质酶解效率的影响..第155-185页
    2.实验材料和方法第157-168页
        2.1 实验材料第157-160页
            2.1.1 水稻材料第157页
            2.1.2 菌株和载体第157-158页
            2.1.3 主要仪器设备第158-160页
        2.2 实验方法第160-168页
            2.2.1 总RNA的提取第160页
            2.2.2 载体构建第160页
            2.2.3 水稻成熟胚愈伤组织的诱导、分化、生根及移栽方法第160页
            2.2.4 转基因苗阳性苗PCR鉴定第160页
            2.2.5 基因表达分析第160-161页
            2.2.6 Os4CL4酶活性分析第161-162页
            2.2.7 抗体制备与检测第162-164页
            2.2.8 Westernblotting第164页
            2.2.9 切片观察第164页
            2.2.10 细胞壁多糖成分的测定第164页
            2.2.11 比色法测定己糖和戊糖第164页
            2.2.12 木质素含量第164页
            2.2.13 气相色谱法(GC-MS)测定半纤维素单糖组成第164-165页
            2.2.14 液相色谱法(HPLC)测定木质素单体组成第165页
            2.2.15 NMR测定木质素组成第165页
            2.2.16 纤维素聚合度的测定第165页
            2.2.17 纤维素结晶度的测定第165页
            2.2.18 表面活性剂的添加及酶解第165-166页
            2.2.19 生物质稀酸预处理及酶解第166页
            2.2.20 CaO预处理及酶解第166页
            2.2.21 分步糖化发酵第166页
            2.2.22 乙醇含量的测定第166页
            2.2.23 白叶枯病菌的接种第166-167页
            2.2.24 数据统计分析第167-168页
    3.实验结果第168-182页
        3.1 RNAi-Os4CL4转基因材料的表达分析第168-171页
            3.1.1 Os4CL4s家族蛋白模体组成第168-169页
            3.1.2 RNAi-Os4CL4基因表达分析第169-170页
            3.1.3 木质素网络合成中其他基因的表达分析第170页
            3.1.4 酶活分析第170-171页
            3.1.5 蛋白表达分析第171页
        3.2 表型观察第171-173页
        3.3 抗倒伏能力第173-174页
        3.4 对细胞壁多糖组成和结构的影响第174-176页
            3.4.1 细胞壁的结构观察第174页
            3.4.2 对纤维素DP,CrI的影响第174-175页
            3.4.3 细胞壁多糖的组成第175-176页
        3.5 木质素组成和结构的变化第176-179页
            3.5.1 木质素总量第176-177页
            3.5.2 木质素单体第177-179页
        3.6 预处理酶解效率第179-181页
        3.7 H单体与酶解产糖的相关性分析第181页
        3.8 白叶枯菌株抗性检测第181-182页
    4.讨论第182-184页
        4.1 在水稻中下调表达Os4CL4对水稻细胞壁的影响第182-183页
        4.2 下调表达4CL对植物生长的影响第183页
        4.3 Os4CL4转基因材料后续共抑制的探索第183-184页
        4.4 Os4CL4转基因水稻后续的工作计划第184页
    5.论文数据说明第184-185页
全文总结与展望第185-187页
参考文献第187-213页
附录第213-230页
    附录1 常用试剂配方第213-225页
    附录2 水稻组织培养基配方第225-227页
    附录3 原生质体分离的试剂配方第227-228页
    附录4 本研究中用到的引物序列第228-229页
    附录5 个人简介第229-230页
攻博期间已发表及待发表的论文第230-233页
致谢第233-237页

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