摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
0 文献综述 | 第14-33页 |
0.1 木质纤维素的结构、组成成分及利用情况 | 第14-18页 |
0.1.1 木质纤维的结构与组成成分 | 第14-15页 |
0.1.2 秸秆资源的利用现状及应用前景 | 第15-18页 |
0.2 植物纤维的预处理方式概述 | 第18-22页 |
0.2.1 物理法 | 第18-20页 |
0.2.2 化学方法 | 第20-21页 |
0.2.3 生物方法 | 第21-22页 |
0.3 绿色木霉的简介 | 第22-24页 |
0.3.1 绿色木霉在发酵中的应用 | 第22-23页 |
0.3.2 绿色木霉的应用前景 | 第23-24页 |
0.4 纤维素及纤维素酶的概述 | 第24-28页 |
0.4.1 纤维素概述 | 第24-25页 |
0.4.2 纤维素酶概述 | 第25-28页 |
0.5 玉米秸秆蛋白饲料 | 第28-29页 |
0.5.1 秸秆饲料 | 第28-29页 |
0.5.2 秸秆蛋白发酵饲料 | 第29页 |
0.6 研究内容及意义 | 第29-33页 |
0.6.1 研究意义 | 第29-31页 |
0.6.2 研究内容 | 第31-33页 |
1 秸秆的预处理及其酶解 | 第33-52页 |
1.1 引言 | 第33页 |
1.2 实验材料与仪器 | 第33-34页 |
1.2.1 实验材料 | 第33页 |
1.2.2 主要试剂 | 第33-34页 |
1.2.3 实验仪器 | 第34页 |
1.3 实验内容及方法 | 第34-38页 |
1.3.1 原料的水分测定 | 第34页 |
1.3.2 玉米秸秆的预处理 | 第34-35页 |
1.3.3 制浆得率的测定 | 第35页 |
1.3.4 黑液中残碱的测定 | 第35页 |
1.3.5 卡伯值的测定 | 第35页 |
1.3.6 葡萄糖标准曲线的制定 | 第35-36页 |
1.3.7 固体酶酶活的测定及酶液制备 | 第36-37页 |
1.3.8 预处理后秸秆的酶解 | 第37页 |
1.3.9 秸秆浆浓度的确定 | 第37页 |
1.3.10 酶用量的确定 | 第37-38页 |
2.3.11 酶解时间、酶解温度、酶解 pH 的确定 | 第38页 |
2.3.12 酶解后总还原糖含量测定 | 第38页 |
1.4 结果与分析 | 第38-50页 |
1.4.1 预处理条件的确定 | 第38-43页 |
1.4.2 葡萄糖标准曲线 | 第43页 |
1.4.3 酶解条件的确定 | 第43-50页 |
1.5 小结 | 第50-52页 |
2 绿色木霉的诱变筛选 | 第52-68页 |
2.1 引言 | 第52页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第52-54页 |
2.2.1 实验材料 | 第52-53页 |
2.2.2 实验仪器 | 第53-54页 |
2.3 实验方法 | 第54-57页 |
2.3.1 菌种培养及纤维素酶菌株的筛选方法 | 第54页 |
2.3.2 粗酶液提取及酶活测定 | 第54页 |
2.3.3 标准曲线制作 | 第54-55页 |
2.3.4 菌体生物量的测定 | 第55页 |
2.3.5 菌种诱变 | 第55-57页 |
2.4 结果和分析 | 第57-67页 |
2.4.1 葡萄糖、木糖标准曲线 | 第57页 |
2.4.2 出发菌株的发酵特性 | 第57-59页 |
2.4.3 诱变选育结果 | 第59-62页 |
2.4.4 变异株 T.viride8140UEUE4-80 与出发菌株的特性比较 | 第62-65页 |
2.4.5 诱变菌株稳定性研究结果 | 第65-67页 |
2.5 小结 | 第67-68页 |
3 突变菌株液态培养下培养基及培养条件的研究 | 第68-81页 |
3.1 引言 | 第68页 |
3.2 实验材料和仪器 | 第68-69页 |
3.2.1 实验材料 | 第68页 |
3.2.2 实验仪器 | 第68-69页 |
3.3 实验方法及实验设计 | 第69-71页 |
3.3.1 实验方法 | 第69-70页 |
3.3.2 实验设计 | 第70-71页 |
3.4 实验结果与分析 | 第71-80页 |
3.4.1 培养基中碳源的影响 | 第71-74页 |
3.4.2 培养基中氮源的确定 | 第74-75页 |
3.4.3 培养基的 pH 对产酶的影响 | 第75-76页 |
3.4.4 金属离子对产酶的影响 | 第76页 |
3.4.5 表面活性剂对产酶影响 | 第76-77页 |
3.4.6 最佳培养基配方 | 第77-78页 |
3.4.7 培养温度优化 | 第78页 |
3.4.8 装液量及摇床转速对产酶的影响 | 第78-79页 |
3.4.9 接种方式选择 | 第79页 |
3.4.10 接种量的选择 | 第79-80页 |
3.4.11 最佳培养条件 | 第80页 |
3.5 小结 | 第80-81页 |
4 绿色木霉固态培养的研究 | 第81-95页 |
4.1 引言 | 第81页 |
4.2 实验材料及仪器 | 第81-82页 |
4.2.1 实验材料 | 第81-82页 |
4.2.2 实验仪器 | 第82页 |
4.3 实验方法 | 第82-85页 |
4.3.1 菌种培养方法 | 第82-83页 |
4.3.2 酶活测定 | 第83页 |
4.3.3 固态培养培养基优化 | 第83-84页 |
4.3.4 培养条件优化 | 第84页 |
4.3.5 扩大培养 | 第84-85页 |
4.4 实验结果与分析 | 第85-94页 |
4.4.1 绿色木霉 T.viride8140UEUE4-80 固态培养下产酶曲线 | 第85-86页 |
4.4.2 碳源优化结果 | 第86-87页 |
4.4.3 氮源优化结果 | 第87-88页 |
4.4.4 无机盐离子添加优化的结果 | 第88-89页 |
4.4.5 最优培养基 | 第89页 |
4.4.6 固液比的优化结果 | 第89-90页 |
4.4.7 装料量的优化结果 | 第90-91页 |
4.4.8 温度对产酶的影响 | 第91页 |
4.4.9 接种量对产酶的影响 | 第91-92页 |
4.4.10 最佳培养条件 | 第92页 |
4.4.11 曲盒中扩大培养的产酶曲线 | 第92-94页 |
4.5 小结 | 第94-95页 |
5 研究结论与展望 | 第95-98页 |
5.1 研究结论 | 第95-96页 |
5.2 问题及展望 | 第96-98页 |
参考文献 | 第98-104页 |
致谢 | 第104-105页 |
个人简历 | 第105页 |
发表的学术论文 | 第105-106页 |