| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-29页 |
| 1.1 纤维素和纤维素酶的性质 | 第12-15页 |
| 1.1.1 纤维素 | 第12-13页 |
| 1.1.2 纤维素酶 | 第13-15页 |
| 1.2 纤维素酶降解纤维素的机理 | 第15-18页 |
| 1.3 纤维素酶提纯的方法 | 第18-20页 |
| 1.4 反胶束体系萃取纤维素酶 | 第20-24页 |
| 1.4.1 表面活性剂和 HLB 值 | 第20-22页 |
| 1.4.2 临界胶束浓度 | 第22-23页 |
| 1.4.3 胶束与反胶束 | 第23-24页 |
| 1.5 反胶束技术萃取酶的研究动态和生物表面活性剂的发展前景 | 第24-28页 |
| 1.5.1 反胶束技术萃取酶的研究历程 | 第24-25页 |
| 1.5.2 生物表面活性剂 | 第25-28页 |
| 1.6 论文研究的意义和研究的主要内容 | 第28-29页 |
| 第2章 纤维素酶和鼠李糖脂的制取与测定 | 第29-38页 |
| 2.1 主要实验药品与仪器 | 第29-30页 |
| 2.1.1 主要实验药品 | 第29页 |
| 2.1.2 主要实验仪器 | 第29-30页 |
| 2.2 纤维素酶的制取与测定 | 第30-33页 |
| 2.2.1 菌种和培养基 | 第30页 |
| 2.2.2 微生物培养发酵产纤维素酶 | 第30页 |
| 2.2.3 纤维素酶酶活测定方法 | 第30-31页 |
| 2.2.4 纤维素酶浓度的测定方法 | 第31-33页 |
| 2.3 鼠李糖脂的制取与特性 | 第33-36页 |
| 2.3.1 菌种和培养基 | 第33-34页 |
| 2.3.2 微生物培养发酵产鼠李糖脂及其分离萃取 | 第34-35页 |
| 2.3.3 苯酚-硫酸分光光度法测定鼠李糖脂浓度的方法 | 第35-36页 |
| 2.3.4 鼠李糖脂的结构 | 第36页 |
| 2.4 小结 | 第36-38页 |
| 第3章 不同反胶束体系萃取纤维素酶的条件优化对比研究 | 第38-60页 |
| 3.1 反胶束萃取纤维素酶 | 第38-40页 |
| 3.1.1 反胶束萃取的方法 | 第38-40页 |
| 3.2 影响反胶束萃取蛋白质的因素 | 第40-54页 |
| 3.2.1 反胶束的形状和大小 | 第40-41页 |
| 3.2.2 萃取时间对不同反胶束体系萃取的影响 | 第41-42页 |
| 3.2.3 溶剂比对不同反胶束体系萃取的影响 | 第42-43页 |
| 3.2.4 水相和有机相比对不同反胶束体系萃取的影响 | 第43-44页 |
| 3.2.5 水相 pH 值对不同反胶束体系萃取的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.6 表面活性剂浓度对不同反胶束体系萃取的影响 | 第45-47页 |
| 3.2.7 离子强度对不同反胶束体系萃取的影响 | 第47-48页 |
| 3.2.8 盐离子种类对不同反胶束体系萃取的影响 | 第48-50页 |
| 3.2.9 表面活性剂种类对纤维素酶萃取效率的影响 | 第50-52页 |
| 3.2.10 温度对纤维素酶萃取效率的影响 | 第52-54页 |
| 3.3 反胶束萃取纤维素酶工艺条件的优化 | 第54-56页 |
| 3.3.1 超声波辅助萃取纤维素酶 | 第54-55页 |
| 3.3.2 其它因素辅助萃取纤维素酶 | 第55-56页 |
| 3.4 生物表面活性剂构建的反胶束体系后萃纤维素酶 | 第56-58页 |
| 3.5 小结 | 第58-60页 |
| 结论与展望 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-70页 |
| 附录 A 攻读硕士学位期间发表的学术论文目录 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
