| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-16页 |
| 图目录 | 第16-17页 |
| 表目录 | 第17-18页 |
| 英文缩略语 | 第18-19页 |
| 1 前言 | 第19-21页 |
| 2 文献综述 | 第21-38页 |
| ·慢性应激 | 第21-22页 |
| ·空间学习记忆 | 第22-23页 |
| ·空间学习记忆的痕迹 | 第22-23页 |
| ·突触可塑性与空间学习记忆 | 第23页 |
| ·海马和额叶皮质 | 第23-26页 |
| ·海马 | 第23-24页 |
| ·海马结构概述 | 第23-24页 |
| ·海马与空间学习记忆 | 第24页 |
| ·额叶皮质 | 第24-25页 |
| ·额叶结构概述 | 第24-25页 |
| ·额叶在学习记忆中的作用 | 第25页 |
| ·海马与额叶的关系 | 第25-26页 |
| ·突触可塑性相关蛋白——神经细胞粘附分子和生长相关蛋白 | 第26-30页 |
| ·神经细胞粘附分子(NCAM) | 第26-28页 |
| ·NCAM 的分子结构性质 | 第26页 |
| ·NCAM 与学习记忆 | 第26-28页 |
| ·生长相关蛋白(GAP-43) | 第28-29页 |
| ·GAP-43 的性质与分布 | 第28页 |
| ·GAP-43 与学习记忆 | 第28-29页 |
| ·NCAM 与GAP-43 | 第29-30页 |
| ·慢性应激对学习记忆的影响 | 第30-31页 |
| ·慢性应激对海马神经元的影响 | 第31-34页 |
| ·慢性应激对海马神经元形态结构的影响 | 第31-32页 |
| ·CA1 区锥体细胞凋亡萎缩 | 第31页 |
| ·CA3 区锥体细胞变性和丢失 | 第31页 |
| ·苔状纤维-CA3 的轴突末梢结构改变 | 第31页 |
| ·齿状回颗粒细胞再生受损 | 第31-32页 |
| ·慢性应激对海马神经元功能的影响 | 第32页 |
| ·慢性应激损伤海马神经元的机制 | 第32-34页 |
| ·兴奋性氨基酸的神经毒性 | 第32-33页 |
| ·葡萄糖代谢障碍 | 第33页 |
| ·Ca2+内流与自由基 | 第33页 |
| ·神经营养因子下调 | 第33-34页 |
| ·慢性应激对突触可塑性相关蛋白NCAM 和GAP-43 表达的影响 | 第34-36页 |
| ·慢性应激对NCAM 表达的影响 | 第34-35页 |
| ·慢性应激对GAP-43 表达的影响 | 第35-36页 |
| ·小结 | 第36-38页 |
| ·以往研究的总结 | 第36页 |
| ·以往研究的不足 | 第36-38页 |
| 3 研究设计 | 第38-42页 |
| ·研究目的与意义 | 第38页 |
| ·研究目的 | 第38页 |
| ·研究意义 | 第38页 |
| ·理论意义 | 第38页 |
| ·实践指导意义 | 第38页 |
| ·研究内容与创新之处 | 第38-39页 |
| ·研究内容 | 第38-39页 |
| ·创新之处 | 第39页 |
| ·研究假设 | 第39-40页 |
| ·研究方法和技术路线 | 第40-42页 |
| ·研究方法 | 第40-41页 |
| ·实验技术路线 | 第41-42页 |
| 4 研究一慢性应激对大鼠空间学习记忆等行为的影响 | 第42-57页 |
| ·材料 | 第42页 |
| ·动物 | 第42页 |
| ·器材 | 第42页 |
| ·试剂 | 第42页 |
| ·方法 | 第42-46页 |
| ·动物分组 | 第42-43页 |
| ·慢性应激大鼠模型的建立 | 第43页 |
| ·体重变化观测 | 第43页 |
| ·行为学测试 | 第43-46页 |
| ·Open-field 旷场测试 | 第44页 |
| ·双瓶蔗糖水消耗实验 | 第44页 |
| ·Morris 水迷宫测试 | 第44-45页 |
| ·Y 迷宫测试 | 第45-46页 |
| ·统计学处理 | 第46页 |
| ·结果 | 第46-51页 |
| ·体重变化 | 第46-47页 |
| ·旷场行为的评定 | 第47-48页 |
| ·双瓶蔗糖水消耗实验结果 | 第48-49页 |
| ·Morris 水迷宫实验结果 | 第49-51页 |
| ·Y 迷宫实验结果 | 第51页 |
| ·讨论 | 第51-56页 |
| ·关于慢性应激大鼠模型 | 第51-52页 |
| ·关于大鼠体重变化、旷场和糖水消耗实验 | 第52-53页 |
| ·慢性应激损伤大鼠空间学习记忆能力 | 第53-56页 |
| ·关于Morris 水迷宫 | 第53-55页 |
| ·关于Y 迷宫 | 第55页 |
| ·采用双迷宫观察大鼠空间学习记忆的意义 | 第55-56页 |
| ·小结 | 第56-57页 |
| 5 研究二慢性应激对大鼠海马、额叶神经细胞形态及数量的影响 | 第57-68页 |
| ·材料 | 第57-58页 |
| ·实验动物 | 第57页 |
| ·器材 | 第57页 |
| ·药品试剂 | 第57页 |
| ·试剂配制 | 第57-58页 |
| ·方法 | 第58-60页 |
| ·动物分组及慢性应激大鼠模型的建立 | 第58页 |
| ·取材及脑片的制作处理 | 第58-59页 |
| ·HE 常规染色 | 第59-60页 |
| ·图像分析 | 第60页 |
| ·统计学处理 | 第60页 |
| ·结果 | 第60-63页 |
| ·海马各亚区及额叶脑区细胞形态观察 | 第60-62页 |
| ·海马各亚区及额叶脑区神经细胞计数 | 第62-63页 |
| ·讨论 | 第63-67页 |
| ·慢性应激损伤大鼠海马神经元形态结构，减少神经细胞数 | 第63-64页 |
| ·慢性应激对大鼠额叶神经元形态造成损伤，但未见神经细胞数改变 | 第64-65页 |
| ·慢性应激影响海马神经元形态及细胞数的机制 | 第65-66页 |
| ·慢性应激引起海马锥体细胞形态改变的机制 | 第65-66页 |
| ·慢性应激引起海马神经细胞数改变的机制 | 第66页 |
| ·慢性应激引起额叶细胞形态改变的机制 | 第66-67页 |
| ·小结 | 第67-68页 |
| 6 研究三慢性应激对大鼠海马、额叶NCAM 和GAP-43 表达的影响 | 第68-77页 |
| ·材料 | 第68页 |
| ·实验动物 | 第68页 |
| ·器材 | 第68页 |
| ·药品试剂 | 第68页 |
| ·试剂配制 | 第68页 |
| ·方法 | 第68-70页 |
| ·动物分组及慢性应激大鼠模型的建立 | 第68-69页 |
| ·脑片的制作处理 | 第69页 |
| ·免疫组化染色 | 第69-70页 |
| ·图像分析 | 第70页 |
| ·统计学处理 | 第70页 |
| ·结果 | 第70-72页 |
| ·海马各亚区及额叶脑区NCAM、GAP-43 蛋白表达的免疫组化染色形态观测 | 第70-71页 |
| ·海马各亚区及额叶脑区NCAM、GAP-43 蛋白表达免疫组化染色结果定量分析 | 第71-72页 |
| ·讨论 | 第72-75页 |
| ·慢性应激减少大鼠海马及额叶NCAM 的表达 | 第72-73页 |
| ·慢性应激减少大鼠海马GAP-43 的表达 | 第73-74页 |
| ·NCAM 和GAP-43 参与慢性应激对大鼠海马及额叶神经元影响的机制过程 | 第74-75页 |
| ·小结 | 第75-77页 |
| 7 研究四大鼠海马、额叶脑区细胞数及蛋白表达与空间学习记忆能力之间的相关性分析 | 第77-80页 |
| ·目的 | 第77页 |
| ·方法 | 第77页 |
| ·结果 | 第77-79页 |
| ·讨论 | 第79-80页 |
| 8 总讨论 | 第80-82页 |
| 9 研究结论与展望 | 第82-84页 |
| ·研究结论 | 第82页 |
| ·研究不足 | 第82页 |
| ·研究展望 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
