首页--生物科学论文--植物学论文--植物生物化学论文

AtRopGEF2和AtSPIKE1参与调控植物脱落酸信号传导的功能研究

论文主要创新点第5-11页
摘要第11-14页
ABSTRACT第14-17页
缩写表第18-19页
1 文献综述第19-57页
    1.1 ROPs小G蛋白的研究进展第19-32页
        1.1.1 ROPs小G蛋白在植物生长发育过程中的作用与机理的研究第19-27页
            1.1.1.1 ROPs在细胞极性生长和形态建成中的作用第20-24页
            1.1.1.2 ROPs在激素信号传导中的作用第24-25页
            1.1.1.3 ROPs在其他生理过程中的作用第25-27页
        1.1.2 ROPs小G蛋白活性的调控第27-32页
            1.1.2.1 GTP酶激活蛋白(GAPs)对ROPs活性的调控第27-30页
            1.1.2.2 鸟苷酸解离抑制因子(RhoGDIs)对ROPs活性的调控第30-31页
            1.1.2.3 其它的ROPs调控方式第31-32页
    1.2 鸟苷酸交换因子(GEFs)对小G蛋白ROPs信号通路的调控机理第32-38页
        1.2.1 哺乳动物中RhoGEFs的调控机制第32-35页
        1.2.2 RopGEFs在植物生长发育中的作用第35-38页
    1.3 植物激素脱落酸(ABA)的研究进展第38-54页
        1.3.1 脱落酸的合成与代谢第38-43页
            1.3.1.1 脱落酸的合成第38-41页
            1.3.1.2 脱落酸的代谢第41-43页
        1.3.2 脱落酸信号通路的研究第43-54页
            1.3.2.1 脱落酸受体的研究第43-47页
            1.3.2.2 蛋白激酶在脱落酸信号通路中的功能第47-49页
            1.3.2.3 磷酸酶在脱落酸信号通路中的功能第49-50页
            1.3.2.4 种子萌发过程中的脱落酸信号转导第50页
            1.3.2.5 保卫细胞中的脱落酸信号转导第50-54页
    1.4 本研究的目的和意义第54-57页
2 材料与方法第57-72页
    2.1 材料第57-64页
        2.1.1 植物材料第57页
        2.1.2 菌株与质粒第57-59页
        2.1.3 引物第59-61页
        2.1.4 工具酶及和试剂盒第61页
        2.1.5 抗体第61-62页
        2.1.6 培养基第62页
        2.1.7 其他主要生物学试剂第62-64页
    2.2 实验方法第64-72页
        2.2.1 拟南芥的培养和表型分析第64-65页
            2.2.1.1 拟南芥的培养和突变体的鉴定第64-65页
            2.2.1.2 超表达转基因植株的建立第65页
        2.2.2 分子生物学与生化实验方法第65-68页
            2.2.2.1 拟南芥基因组DNA提取第65页
            2.2.2.2 植物总RNA的提取第65页
            2.2.2.3 基因克隆与载体构建第65-66页
            2.2.2.4 质粒的提取第66页
            2.2.2.5 RT-PCR第66页
            2.2.2.6 蛋白质的原核表达和纯化第66-67页
            2.2.2.7 拟南芥总蛋白的提取第67页
            2.2.2.8 Western blot(免疫印迹)实验第67页
            2.2.2.9 蛋白质Pull-down实验第67页
            2.2.2.10 酵母双杂交实验(Y2H)第67页
            2.2.2.11 蛋白降解和泛素化实验第67-68页
            2.2.2.12 体外磷酸化实验第68页
        2.2.3 细胞生物学方法第68-72页
            2.2.3.1 拟南芥种子萌发实验第68页
            2.2.3.2 ABA诱导的气孔关闭实验及失水实验第68-69页
            2.2.3.3 拟南芥叶肉原生质体的分离和转化第69页
            2.2.3.4 基因枪瞬时转化第69页
            2.2.3.5 荧光显微镜的观察第69页
            2.2.3.6 荧光双分子互补(BiFC)实验第69页
            2.2.3.7 GUS染色的组织化学分析第69-70页
            2.2.3.8 Luciferase Assay第70页
            2.2.3.9 线粒体的提取第70页
            2.2.3.10 免疫染色第70-72页
3 结果与分析第72-129页
    3.1 RopGEF2在ABA调控的种子萌发过程中的功能的研究第72-113页
        3.1.1 瞬时超表达RopGEFs对ABA信号通路的影响第72-73页
        3.1.2 ropgef2-ko缺失突变体在种子萌发过程中对ABA超敏感第73-78页
            3.1.2.1 ropgef2-ko突变体及RopGEF2转基因植株的鉴定第73-74页
            3.1.2.2 ropgef2-ko突变体及RopGEF2转基因植株的种子萌发对ABA的敏感性分析第74-76页
            3.1.2.3 amiR-RopGEF2转基因植株在种子萌发过程中对ABA超敏感第76-78页
        3.1.3 ropgef2-ko突变体及转基因植株在拟南芥其它生理过程中的表型分析第78-82页
            3.1.3.1 ropgef2-ko突变体及转基因植株的主根的伸长和气孔运动对ABA的敏感性分析第78-80页
            3.1.3.2 RopGEF2超表达引起依赖ROPs功能的子叶形态异常第80-82页
        3.1.4 RopGEF2基因的缺失增强了ABA应答基因的表达第82页
        3.1.5 RopGEF2主要在胚胎发育和种子萌发过程中表达第82-85页
        3.1.6 YFP-RopGEF2主要定位在细胞膜、细胞质和线粒体上,而PRONE2结构域是决定RopGEF2线粒体定位的关键区域第85-90页
            3.1.6.1 YFP-RopGEF2主要定位在细胞膜,细胞质和线粒体上第85-88页
            3.1.6.2 PRONE2结构域也主要定位在线粒体上第88-90页
        3.1.7 超表达PRONE2没有产生类似超表达RopGEF2的表型第90-92页
        3.1.8 RopGEF2可以和ROPs(ROP2,ROP6和ROP10)互作第92-97页
            3.1.8.1 BiFC和FRET以及半体内Pull-down实验表明RopGEF2可以与ROP2,ROP6和ROP10相互作用第92页
            3.1.8.2 体外Y2H和Pull-down实验验证RopGEF2可以与ROP2,ROP6和ROP10相互作用第92-97页
        3.1.9 与ROPs共转可以改变RopGEF2的亚细胞定位第97-100页
        3.1.10 ABA通过蛋白酶体依赖的降解途径下调RopGEF2的蛋白水平第100-104页
            3.1.10.1 ABA不影响RopGEF2基因的转录第100-101页
            3.1.10.2 ABA可以通过泛素-蛋白酶体途径降解RopGEF2第101-104页
        3.1.11 ABA引起的RopGEF2的降解主要发生在细胞质,而且与ROPs结合可以增强RopGEF2蛋白的稳定性第104-105页
            3.1.11.1 ABA引起的RopGEF2的降解主要发生在细胞质第104-105页
            3.1.11.2 与ROPs结合可以增强RopGEF2蛋白的稳定性第105页
        3.1.12 小结与讨论第105-113页
            3.1.12.1 小结第105-109页
            3.1.12.2 讨论第109-113页
    3.2 SPIKE1在ABA诱导的气孔关闭过程中的功能研究第113-129页
        3.2.1 amiR-SPK1转基因植株的建立和鉴定第113-115页
        3.2.2 amiR-SPK1转基因植株增强了气孔关闭对ABA的敏感度第115页
        3.2.3 与CA-rop6杂交抑制了amiR-SPK1转基因植株气孔运动对ABA的超敏感反应第115-116页
        3.2.4 amiR-SPK1转基因植株增强了保卫细胞微丝骨架对ABA的响应第116-120页
            3.2.4.1 SPK1可以影响ABA诱导的保卫细胞的微丝细胞骨架的重排过程第116-119页
            3.2.4.2 SPK1不影响保卫细胞的微管细胞骨架的排列第119-120页
        3.2.5 SPK1可以被CPK3磷酸化第120-122页
            3.2.5.1 激酶CPK3可在S408位点上对SPK1蛋白进行磷酸化修饰第120-121页
            3.2.5.2 激酶CPK3可以和SPK1相互作用第121-122页
        3.2.6 ABA降低了SPK1和ROP6的结合能力第122-123页
        3.2.7 ABA,PYR以及ABI1对CPK3磷酸化SPK1的影响第123-125页
        3.2.8 小结与讨论第125-129页
            3.2.8.1 小结第125-126页
            3.2.8.2 讨论第126-129页
4 参考文献第129-157页
5 在读期间发表和整理的文章第157-158页
6 致谢第158-159页

论文共159页,点击 下载论文
上一篇:SRSF2蛋白促进转录的独特作用和SR及hnRNP蛋白对基因表达的影响机制
下一篇:藏东南地山雀种群的交配系统和行为博弈