首页--农业科学论文--畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂论文--动物医学(兽医学)论文--兽医药物学论文--兽医药理学论文

抗菌肽Cecropin B对猪关键药物代谢酶CYP3A29的表达调控及分子机制研究

摘要第7-10页
Abstract第10-12页
缩略语表(Abbreviation)第13-15页
第1章 文献综述第15-31页
    1.1 抗菌肽的分类第15-18页
        1.1.1 根据来源分类第16-17页
        1.1.2 根据化学结构分类第17页
        1.1.3 根据肽链结构分类第17-18页
    1.2 抗菌肽理化性质及生物学活性第18-19页
    1.3 抗菌肽的应用第19-20页
    1.4 天蚕素抗菌肽的研究进展第20-21页
    1.5 细胞色素P450酶概述第21-22页
    1.6 研究外源性物质对猪CYP450酶影响的意义第22-23页
    1.7 猪CYP450酶的相关调控机理第23-27页
    1.8 猪CYP3A是人CYP3A的最适研究模型第27-29页
    1.9 生物药物对药物代谢酶的表达调控研究第29-31页
第2章 Cecropin B对猪CYP3A29的表达的影响第31-43页
    2.1 前言第31-32页
    2.2 实验材料及试剂配制第32-34页
        2.2.1 细胞系及实验动物第32页
        2.2.2 细胞培养相关试剂及试剂配制第32页
        2.2.3 荧光定量、Western Blot相关试剂第32-34页
        2.2.4 主要实验仪器及设备第34页
    2.3 实验方法第34-38页
        2.3.1 猪肝细胞的原代培养第34页
        2.3.2 猪肝细胞的传代培养第34-35页
        2.3.3 细胞毒性试验(MTT法)第35页
        2.3.4 荧光定量第35-37页
        2.3.5 Western blot第37-38页
        2.3.6 统计学方法第38页
    2.4 结果与分析第38-42页
        2.4.1 Cecropin B对细胞的毒性作用研究第38-39页
        2.4.2 Cecropin B对CYP3A29、PXR表达的浓度梯度影响第39-40页
        2.4.3 Cecropin B对CYP3A29、PXR表达的时间梯度影响第40-41页
        2.4.4 Cecropin B对RXR-α 表达的影响第41-42页
    2.5 讨论第42-43页
第3章 CYP3A29及PXR启动子载体的构建及转录因子结合位点分析第43-56页
    3.1 前言第43页
    3.2 实验材料及试剂配制第43-44页
        3.2.1 细胞系第43页
        3.2.2 载体构建、转染相关试剂及试剂配制第43-44页
        3.2.3 主要实验仪器及设备第44页
    3.3 实验方法第44-48页
        3.3.1 猪肝细胞的传代培养第44-45页
        3.3.2 载体构建第45-48页
        3.3.3 定点突变试验第48页
        3.3.4 荧光素酶法测启动子活性第48页
        3.3.5 统计学方法第48页
    3.4 结果与分析第48-55页
        3.4.1 CYP3A29启动子报告质粒的构建第48-51页
        3.4.2 CYP3A29启动子区转录因子结合位点分析第51-52页
        3.4.3 PXR启动子的构建及启动子区转录因子结合位点的分析第52-55页
    3.5 讨论第55-56页
第4章 Cecropin B对CYP3A29表达调控的信号通路研究第56-80页
    4.1 前言第56页
    4.2 实验材料及试剂配制第56-59页
        4.2.1 细胞系第56页
        4.2.2 细胞培养相关试剂及配制第56-57页
        4.2.3 荧光定量、Western Blot、RNA干扰相关试剂第57-58页
        4.2.4 染色质免疫共沉淀(Chromatin immunoprecipitation assay, ChIP)试验、细胞免疫荧光(Immunohistochemistry ,IHC)试验、免疫共沉淀(Co-immunoprecipitation,Co-IP)试验相关试剂第58页
        4.2.5 主要实验仪器及设备第58-59页
    4.3 实验方法第59-65页
        4.3.1 猪肝细胞的传代培养第59页
        4.3.2 荧光素酶活性测定试验第59-60页
        4.3.3 荧光定量第60页
        4.3.4 Western blot第60页
        4.3.5 RNA干扰第60-61页
        4.3.6 染色质免疫共沉淀(Chromatin immunoprecipitation assay, ChIP)第61-63页
        4.3.7 细胞免疫荧光(Immunohistochemistry ,IHC)第63页
        4.3.8 免疫共沉淀(Co-immunoprecipitation,Co-IP)第63-64页
        4.3.9 统计学方法第64-65页
    4.4 结果与分析第65-77页
        4.4.1 PXR、RXR-α 在Cecropin B抑制CYP3A29表达过程中的作用研究第65-67页
        4.4.2 Cecropin B通过核受体PXR、RXR-α 在转录水平对CYP3A29启动子的抑制作用研究第67-69页
        4.4.3 Cecropin B诱导激活NF-κB的研究第69-72页
        4.4.4 Cecropin B激活NF-κB/PXR/RXR-α 信号通路的研究第72-74页
        4.4.5 Cecropin B通过TLRs进行跨膜信号传导调控CYP3A29的表达的研究第74-77页
    4.5 讨论第77-80页
第5章 结论第80-81页
第6章 参考文献第81-103页
致谢第103-104页
附录第104-106页

论文共106页,点击 下载论文
上一篇:治理视阈下农地整治模式比较研究
下一篇:Electroacupuncture Attenuates Visceral Hypersensitivity by Suppressing Spinal PAR-2 and CGRP Expressions in Animals with TNBS-induced Ileitis