| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 第一章 绪论 | 第21-49页 |
| 1.1 紫外光化学接枝 | 第21-29页 |
| 1.1.1 紫外光化学接枝聚合机理 | 第21-25页 |
| 1.1.2 紫外光化学接枝实现方式 | 第25-27页 |
| 1.1.3 紫外光化学接枝的生物应用 | 第27-29页 |
| 1.2 可见光引发聚合 | 第29-34页 |
| 1.2.1 可见光引发剂 | 第29-32页 |
| 1.2.2 见光引发接枝聚合 | 第32-34页 |
| 1.3 酶的固定化 | 第34-43页 |
| 1.3.1 酶的固定化方法概述 | 第34-37页 |
| 1.3.2 木聚糖酶的固定化研究进展 | 第37-43页 |
| 1.4 薄层水凝胶的制备 | 第43-47页 |
| 1.4.1 自支撑型薄层水凝胶 | 第43-44页 |
| 1.4.2 固定于基材表面的薄层水凝胶 | 第44-47页 |
| 1.5 本论文的研究意义及研究内容 | 第47-49页 |
| 第二章 可见光引发表面接枝交联聚合以及木聚糖酶原位固定化的研究 | 第49-85页 |
| 2.1 引言 | 第49-50页 |
| 2.2 实验材料 | 第50-51页 |
| 2.2.1 玉米芯 | 第50页 |
| 2.2.2 实验药品及试剂 | 第50-51页 |
| 2.2.3 DNS试剂 | 第51页 |
| 2.2.4 实验仪器设备 | 第51页 |
| 2.3 实验部分 | 第51-60页 |
| 2.3.1 玉米芯单糖组成分析以及成分分析 | 第51-54页 |
| 2.3.2 玉米芯半纤维素成分的提取及表征 | 第54-56页 |
| 2.3.3 可见光引发表面接枝交联聚合以及原位包埋木聚糖酶 | 第56-57页 |
| 2.3.4 固定化木聚糖酶酶膜的表征方法 | 第57页 |
| 2.3.5 聚合条件对固定木聚糖酶的影响 | 第57页 |
| 2.3.6 固定化酶的酶学性质研究 | 第57-58页 |
| 2.3.7 固定化酶的底物特异性以及动力学研究 | 第58-59页 |
| 2.3.8 重复利用性测定 | 第59页 |
| 2.3.9 金属离子、还原剂以及抑制剂对固定化酶的影响 | 第59页 |
| 2.3.10 固定化酶水解玉米芯半纤维素 | 第59-60页 |
| 2.3.11 β-木糖苷酶对酶解半纤维素的影响 | 第60页 |
| 2.3.12 可见光包埋与紫外光包埋的对照 | 第60页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第60-82页 |
| 2.4.1 玉米芯的组成成分比例以及半纤维素的提取和表征 | 第60-65页 |
| 2.4.2 无纺布表面可见光接枝聚合并原位包埋木聚糖酶的方案设计 | 第65-66页 |
| 2.4.3 无纺布表面接枝交联聚合后的表征 | 第66-67页 |
| 2.4.4 聚合条件对酶固定效率以及固定密度的影响 | 第67-70页 |
| 2.4.5 pH和温度对酶活的影响 | 第70-74页 |
| 2.4.6 固定化酶的重复利用性研究 | 第74-75页 |
| 2.4.7 固定化酶的底物特异性以及动力学研究 | 第75-77页 |
| 2.4.8 金属离子以及常见化合物对固定化酶的影响 | 第77-78页 |
| 2.4.9 固定化酶水解玉米芯半纤维素 | 第78-79页 |
| 2.4.10 β-木糖苷酶和木聚糖酶的协同作用 | 第79-81页 |
| 2.4.11 可见光较紫外光的优越性 | 第81-82页 |
| 2.5 本章小结 | 第82-85页 |
| 第三章 可见光引发制备半纤维素接枝丙烯酸水凝胶以及蛋白质药物释放的研究 | 第85-103页 |
| 3.1 引言 | 第85-86页 |
| 3.2 实验材料 | 第86-87页 |
| 3.2.1 主要药品及试剂 | 第86页 |
| 3.2.2 实验仪器设备 | 第86-87页 |
| 3.2.3 半纤维素 | 第87页 |
| 3.3 实验部分 | 第87-90页 |
| 3.3.1 半纤维素接枝丙烯酸水凝胶的制备 | 第87-88页 |
| 3.3.2 HC-g-PAA水凝胶的表征 | 第88页 |
| 3.3.3 HC-g-PAA水凝胶的溶胀性能测试 | 第88-89页 |
| 3.3.4 HC-g-PAA水凝胶的pH响应性能 | 第89页 |
| 3.3.5 HC-g-PAA水凝胶的有机溶剂响应性能 | 第89页 |
| 3.3.6 HC-g-PAA水凝胶的离子响应性能 | 第89页 |
| 3.3.7 载药水凝胶的体外释放 | 第89-90页 |
| 3.3.8 BSA的活性测定 | 第90页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第90-101页 |
| 3.4.1 水凝胶的合成及表征 | 第90-94页 |
| 3.4.2 水凝胶的溶胀行为研究 | 第94-96页 |
| 3.4.3 水凝胶的微观结构研究 | 第96-97页 |
| 3.4.4 水凝胶的pH可逆响应研究 | 第97页 |
| 3.4.5 水凝胶的有机溶剂可逆响应研究 | 第97-98页 |
| 3.4.6 水凝胶的离子响应行为 | 第98-99页 |
| 3.4.7 水凝胶的释药性能研究 | 第99-100页 |
| 3.4.8 BSA的活性测定 | 第100-101页 |
| 3.5 本章小结 | 第101-103页 |
| 第四章 可见光引发表面接枝交联聚合制备pH敏感薄层水凝胶膜以及蛋白质药物释放研究 | 第103-125页 |
| 4.1 引言 | 第103-104页 |
| 4.2 实验材料 | 第104-105页 |
| 4.2.1 主要药品及试剂 | 第104页 |
| 4.2.2 丙烯酸单体的处理 | 第104页 |
| 4.2.3 实验仪器设备 | 第104-105页 |
| 4.3 实验部分 | 第105-108页 |
| 4.3.1 聚己内酯基膜的制备 | 第105页 |
| 4.3.2 引发剂ITXSP的固定 | 第105页 |
| 4.3.3 pH敏感水凝胶膜的制备 | 第105-106页 |
| 4.3.4 水凝胶膜表面形貌的表征 | 第106页 |
| 4.3.5 聚合时间和单体浓度的影响 | 第106页 |
| 4.3.6 水凝胶膜的pH响应行为考察 | 第106-107页 |
| 4.3.7 BSA的包埋及体外释放动力学 | 第107页 |
| 4.3.8 释放后的BSA构象测定 | 第107-108页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第108-123页 |
| 4.4.1 可见光引发PCL表面交联聚合制备pH敏感水凝胶膜的流程设计 | 第108-109页 |
| 4.4.2 PCL-ITXSP的表征 | 第109页 |
| 4.4.3 PCL表面水凝胶薄膜的表征 | 第109-111页 |
| 4.4.4 聚合时间和单体浓度的影响 | 第111-112页 |
| 4.4.5 水凝胶膜的pH敏感响应以及溶胀动力学表征 | 第112-116页 |
| 4.4.6 原位包埋蛋白质的表征 | 第116-118页 |
| 4.4.7 水凝胶膜释放蛋白质行为的表征 | 第118-122页 |
| 4.4.8 释放后BSA的构象测定 | 第122-123页 |
| 4.5 本章小结 | 第123-125页 |
| 第五章 主要结论 | 第125-127页 |
| 参考文献 | 第127-147页 |
| 致谢 | 第147-149页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第149-151页 |
| 作者简介 | 第151-153页 |
| 导师简介 | 第153-154页 |
| 北京化工大学博士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第154-155页 |
