中文摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
1 前言 | 第12-22页 |
1.1 植物遗传连锁图谱构建 | 第12-14页 |
1.1.1 DNA分子标记及其特点 | 第12页 |
1.1.2 遗传连锁图谱构建方法与步骤 | 第12-14页 |
1.1.2.1 遗传标记的选择 | 第12-13页 |
1.1.2.2 亲本组合的确定 | 第13页 |
1.1.2.3 建立作图群体 | 第13-14页 |
1.1.2.4 连锁群及标记位点的确定 | 第14页 |
1.2 QTL定位原理与方法 | 第14-16页 |
1.2.1 零区间作图法 | 第14-15页 |
1.2.2 单区间作图法 | 第15页 |
1.2.3 复合区间作图法 | 第15页 |
1.2.4 基于混合线性模型的复合区间作图法 | 第15页 |
1.2.5 完备区间作图法 | 第15-16页 |
1.3 花生遗传图谱的构建现状 | 第16-17页 |
1.4 SSR标记在花生上的应用进展 | 第17-20页 |
1.4.1 SSR在花生栽培种遗传多样性分析中的应用 | 第17页 |
1.4.2 SSR在花生分子标记辅助育种中的应用 | 第17-18页 |
1.4.3 SSR在栽培花生分子遗传图谱构建中的应用 | 第18页 |
1.4.4 SSR在栽培花生指纹图谱构建中的应用 | 第18页 |
1.4.5 SSR在花生重要性状基因定位中的应用 | 第18-19页 |
1.4.6 SSR在种质资源保存与利用上的应用 | 第19-20页 |
1.5 花生重要性状的QTL研究进展 | 第20-22页 |
1.5.1 花生抗病性分子标记的研究进展 | 第20页 |
1.5.2 花生抗旱相关性状的QTL分析 | 第20页 |
1.5.3 花生品质相关性状的QTL分析 | 第20-21页 |
1.5.4 花生产量相关性状的QTL研究 | 第21-22页 |
2 材料与方法 | 第22-27页 |
2.1 供试材料和田间种植 | 第22页 |
2.2 性状调查与数据分析 | 第22-23页 |
2.3 花生SSR分析 | 第23-26页 |
2.3.1 SRR引物来源 | 第23页 |
2.3.2 总DNA的提取与检测 | 第23-24页 |
2.3.3 PCR反应体系及反应程序 | 第24-25页 |
2.3.4 8.0%聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第25-26页 |
2.4 连锁遗传图谱的构建与QTL定位 | 第26-27页 |
3 结果与分析 | 第27-56页 |
3.1 亲本性状和RIL群体性状的分布特征 | 第27-36页 |
3.1.1 主茎高 | 第27-28页 |
3.1.2 侧枝长 | 第28页 |
3.1.3 分枝数 | 第28-29页 |
3.1.4 果长 | 第29-30页 |
3.1.5 果宽 | 第30-31页 |
3.1.6 果壳厚度 | 第31-32页 |
3.1.7 单果重 | 第32-33页 |
3.1.8 单仁重 | 第33-34页 |
3.1.9 出仁率 | 第34-35页 |
3.1.10 单株生产力 | 第35-36页 |
3.2 群体性状相关性 | 第36-39页 |
3.3 栽培种花生连锁遗传图谱的构建 | 第39-40页 |
3.4 花生株高、分枝数和荚果性状QTL定位 | 第40-50页 |
3.4.1 主茎高QTL定位 | 第41-42页 |
3.4.2 侧枝长QTL定位 | 第42-43页 |
3.4.3 分枝数QTL定位 | 第43-44页 |
3.4.4 果长QTL定位 | 第44-45页 |
3.4.5 果宽QTL定位 | 第45-46页 |
3.4.6 果壳厚度QTL定位 | 第46页 |
3.4.7 单果重QTL定位 | 第46-47页 |
3.4.8 花生单仁重的QTL定位 | 第47页 |
3.4.9 出仁率QTL定位 | 第47-48页 |
3.4.10 花生单株生产力的QTL定位 | 第48-50页 |
3.5 QTL聚集区域分析 | 第50-53页 |
3.6 主效QTLs及QTL聚集区域对应物理图谱预测 | 第53-56页 |
4 讨论 | 第56-59页 |
4.1 亲本间标记多态性分析 | 第56页 |
4.2 遗传图谱分析 | 第56-57页 |
4.3 与整合图谱比较 | 第57-58页 |
4.4 与现有QTLs比较 | 第58-59页 |
5 结论 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-66页 |
附录 | 第66-67页 |
图版Ⅰ | 第67-68页 |
图版Ⅱ | 第68-69页 |
图版Ⅲ | 第69-70页 |
致谢 | 第70页 |