摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
缩写词表 | 第11-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-22页 |
1.1 植物应对磷胁迫的适应性机制 | 第13-15页 |
1.1.1 低磷胁迫下植物根系形态学适应性 | 第14-15页 |
1.1.2 磷饥饿诱导侧根的生长 | 第15页 |
1.1.3 排根是植物适应极端低磷胁迫的变化 | 第15页 |
1.2 低磷胁迫下植物的生理生化变化 | 第15-17页 |
1.2.1 植物对土壤难溶态无机磷的吸收生理变化 | 第16页 |
1.2.2 根系对土壤难溶态有机磷的吸收生理变化 | 第16页 |
1.2.3 磷转运蛋白 | 第16-17页 |
1.3 低磷胁迫对植物代谢途径的影响 | 第17-18页 |
1.4 低磷胁迫对植物生物膜脂的影响 | 第18-19页 |
1.5 甘油磷酸二酯磷酸二酯酶(GDPD) | 第19-20页 |
1.6 本研究目的与意义 | 第20-22页 |
第二章 大豆GmGDPD1基因的克隆与亚细胞定位 | 第22-34页 |
2.1 材料与方法 | 第22-25页 |
2.1.1 材料 | 第22页 |
2.1.2 试剂与仪器 | 第22-23页 |
2.1.3 植物总RNA的提取、纯化cDNA第一链的合成 | 第23页 |
2.1.4 GmGDPD1基因cDNA全长的克隆 | 第23-24页 |
2.1.5 GmGDPD1基因的生物信息学分析 | 第24页 |
2.1.6 多序列比对和系统进化分析 | 第24页 |
2.1.7 亚细胞定位 | 第24页 |
2.1.8 基因组织表达分析 | 第24-25页 |
2.2 结果与分析 | 第25-33页 |
2.2.1 大豆GmGDPD1基因的克隆及其基因序列分析 | 第25-29页 |
2.2.2 大豆GmGDPD1基因的组织表达分析 | 第29-30页 |
2.2.3 大豆GmGDPD1基因亚细胞定位 | 第30-33页 |
2.3 讨论 | 第33-34页 |
第三章 大豆GmGDPD1的诱导表达 | 第34-40页 |
3.1 材料方法 | 第34-36页 |
3.1.1 材料 | 第34页 |
3.1.2 试剂与仪器 | 第34页 |
3.1.3 植物总RNA的提取、纯化及cDNA第一链的合成 | 第34页 |
3.1.4 低磷诱导下GmGDPD1基因的时空表达 | 第34-35页 |
3.1.5 盐、干旱胁迫对GmGDPD1基因表达的影响 | 第35页 |
3.1.6 种子萌发过程中GmGDPD1的表达情况分析 | 第35页 |
3.1.7 缺少相关元素对GmGDPD1基因表达的影响 | 第35-36页 |
3.2 结果与分析 | 第36-39页 |
3.2.1 持续低磷胁迫下大豆GmGDPD1基因的表达 | 第36-37页 |
3.2.2 盐、干旱处理条件下对GmGDPD1基因表达的影响 | 第37页 |
3.2.3 大豆种子萌发过程中GmGDPD1基因的表达情况 | 第37-38页 |
3.2.4 不同元素的缺失对GmGDPD1基因表达的诱导 | 第38-39页 |
3.3 讨论 | 第39-40页 |
第四章 大豆GmGDPD1基因转化拟南芥及功能分析 | 第40-50页 |
4.1 材料方法 | 第40-43页 |
4.1.1 材料 | 第40页 |
4.1.2 试剂与仪器 | 第40页 |
4.1.3 植物基因组DNA的提取 | 第40页 |
4.1.4 植物总RNA的提取、纯化及cDNA第一链的合成 | 第40-41页 |
4.1.5 植物表达载体的构建 | 第41页 |
4.1.6 重组质粒转化根癌农杆菌 | 第41页 |
4.1.7 受体材料的种植 | 第41-42页 |
4.1.8 农杆菌介导的拟南芥转化 | 第42页 |
4.1.9 转基因植株的鉴定 | 第42-43页 |
4.1.10 转基因拟南芥的表型性状分析 | 第43页 |
4.2 结果与分析 | 第43-49页 |
4.2.1 植物表达载体的构建 | 第43页 |
4.2.2 对拟南芥敲除AtGDPD1的突变体进行检测 | 第43-44页 |
4.2.3 35S::GmGDPD1转基因拟南芥阳性植株检测 | 第44-45页 |
4.2.4 转基因拟南芥的基因表达鉴定 | 第45页 |
4.2.5 T3代转基因植株的观察 | 第45-49页 |
4.3 讨论 | 第49-50页 |
第五章 全文总结 | 第50-52页 |
本研究创新之处 | 第52-54页 |
参考文献 | 第54-60页 |
附录 | 第60-74页 |
附录一 实验方法 | 第60-70页 |
附录二 常用培养基和相关试剂的配置 | 第70-74页 |
致谢 | 第74页 |