| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-34页 |
| ·农作物病害防治 | 第14页 |
| ·生物防治 | 第14-15页 |
| ·植物根际促生菌 | 第15页 |
| ·革兰氏阴性普城菌沙雷菌属(Serratia.plymuthica) | 第15-18页 |
| ·S.plymuthica作为植物病原菌生物防治因子 | 第16页 |
| ·S plymuthica来控制土传病害 | 第16-17页 |
| ·用S.plymuthica控制收获后的真菌病害 | 第17页 |
| ·使用S.plymuthica来控制真菌引起的叶疾病 | 第17-18页 |
| ·生物防治的机理 | 第18-22页 |
| ·抗生作用 | 第18-19页 |
| ·寄生现象 | 第19-21页 |
| ·铁载体和铁元素的竞争 | 第21页 |
| ·植物诱导抗性的机制 | 第21-22页 |
| ·植物生长促进 | 第22页 |
| ·细菌群体感应系统及其信号分子 | 第22-29页 |
| ·细菌群体感应的发现 | 第22-23页 |
| ·群体感应信号分子 | 第23-24页 |
| ·群体感应的作用 | 第24-26页 |
| ·群体感应系统调控PGPR与寄主进行信号交流 | 第26-27页 |
| ·蛋白质组学分析群体感应系统 | 第27-29页 |
| ·植物转基因技术及常用方法 | 第29-32页 |
| ·植物转基因技术 | 第29-30页 |
| ·常用植物转基因方法 | 第30-31页 |
| ·农杆菌介导的floral-dip转基因 | 第31-32页 |
| ·研究意义 | 第32页 |
| ·主要研究内容和技术路线 | 第32-34页 |
| ·主要研究内容 | 第32-33页 |
| ·技术路线 | 第33-34页 |
| 第二章 AHL信号分子调节植物生长和缓解盐胁迫 | 第34-55页 |
| ·实验材料仪器与试剂及配制 | 第34-38页 |
| ·实验材料与仪器 | 第34-35页 |
| ·试剂及配制 | 第35-38页 |
| ·实验方法 | 第38-41页 |
| ·实验结果 | 第41-52页 |
| ·梯度AHL浓度下Arabidopsis thaliana生长 | 第41-42页 |
| ·AHL浓度缓解盐胁迫Arabidopsis thaliana生长 | 第42-43页 |
| ·AHL浓度缓解ABA胁迫Arabidopsis thaliana生长 | 第43-44页 |
| ·梯度AHL信号分子下水稻种子萌发及幼苗生长 | 第44-46页 |
| ·AHL梯度下缓解盐胁迫水稻萌发及生长 | 第46-48页 |
| ·AHL梯度下缓解ABA胁迫水稻萌发及生长 | 第48-49页 |
| ·C48及其双突变体菌过滤上清液缓解ABA胁迫水稻萌发 | 第49-51页 |
| ·DR5::GUS基因报告拟南芥应答AHL信号分子 | 第51页 |
| ·激光共聚焦检测AHL信号分子处理Arabidopsis thaliana和水稻后体内NO与过氧化氢的含量 | 第51-52页 |
| ·讨论 | 第52-55页 |
| 第三章 AHL信号分子诱导不定根的形成 | 第55-64页 |
| ·实验材料与试剂 | 第55页 |
| ·试验方法 | 第55-56页 |
| ·实验结果 | 第56-62页 |
| ·梯度AHL信号分子处理绿豆幼苗产生不定根 | 第56-57页 |
| ·去除内源IAA后AHL调节绿豆产生不定根 | 第57-59页 |
| ·IBA通过H2O2促进绿豆不定根生长 | 第59-60页 |
| ·AHL通过调节IAA产生并通过H2O2第二信使调节绿豆不定根形成 | 第60-61页 |
| ·不同处理绿豆幼苗不定根生长情况 | 第61-62页 |
| ·各处理绿豆幼苗的不定根中H2O2的积累 | 第62页 |
| ·讨论 | 第62-64页 |
| 第四章 蛋白组学分析拟南芥和水稻对生防菌信号分子应答生防菌QS信号分子的应答 | 第64-90页 |
| ·实验仪器、材料与试剂 | 第65-67页 |
| ·实验仪器 | 第65页 |
| ·实验材料 | 第65页 |
| ·试剂和药品 | 第65页 |
| ·二维电泳相关试剂及其配置方法 | 第65-67页 |
| ·实验方法 | 第67-74页 |
| ·材料准备与蛋白提取 | 第67-69页 |
| ·蛋白质浓度测定 | 第69-70页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第70页 |
| ·二维电泳 | 第70-72页 |
| ·质谱鉴定 | 第72-74页 |
| ·结果 | 第74-88页 |
| ·蛋白质标准曲线 | 第74页 |
| ·拟南芥双向电泳及质谱鉴定 | 第74-79页 |
| ·水稻根部双向电泳及质谱鉴定结果 | 第79-85页 |
| ·水稻叶片二维电泳及质谱鉴定结果 | 第85-88页 |
| ·讨论 | 第88-90页 |
| 第五章 转基因技术分析生防菌群体感应系统的作用 | 第90-107页 |
| ·实验材料 | 第90-92页 |
| ·植物材料 | 第90页 |
| ·各种酶及试剂 | 第90-91页 |
| ·植物培养材料 | 第91页 |
| ·实验主要仪器 | 第91-92页 |
| ·常用培养基和溶液配制 | 第92页 |
| ·培养基配制 | 第92页 |
| ·常用溶液配制 | 第92页 |
| ·实验方法 | 第92-100页 |
| ·植物培养及生长条件 | 第92-93页 |
| ·PCR扩增 | 第93-94页 |
| ·质粒提取 | 第94-96页 |
| ·E.coli超级感受态细胞的制备 | 第96页 |
| ·质粒酶切 | 第96页 |
| ·连接反应 | 第96页 |
| ·质粒转化(E.coli) | 第96-97页 |
| ·核酸的电泳 | 第97页 |
| ·农杆菌感受态细胞的制备 | 第97-98页 |
| ·电击转化农杆菌 | 第98页 |
| ·Arabidopsis thaliana的转化 | 第98页 |
| ·Arabidopsis thaliana植株的转化及抗性苗的筛选 | 第98-99页 |
| ·Arabidopsis thaliana基因组DNA提取 | 第99页 |
| ·植物杂交 | 第99-100页 |
| ·结果 | 第100-106页 |
| ·Serratia plymuthica与Arabidopsis thaliana基因组密码子使用概率情况分析 | 第100-101页 |
| ·引物设计 | 第101-102页 |
| ·spli,spllR;spsI,spsR基因pfu扩增 | 第102页 |
| ·In-fution | 第102-103页 |
| ·pGREEN35S-splI/spllR/spsI/spsR菌落PCR | 第103-104页 |
| ·酶切结果 | 第104页 |
| ·转基因Arabidopsis thaliana | 第104-105页 |
| ·转基因苗鉴定 | 第105-106页 |
| ·讨论 | 第106-107页 |
| 第六章 结论与展望 | 第107-109页 |
| ·结论 | 第107-108页 |
| ·展望 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
| 在学期间发表论文 | 第118页 |
| 参加课题 | 第118页 |
