中文摘要 | 第1-15页 |
英文摘要 | 第15-18页 |
第一章 前言 | 第18-37页 |
1 皂苷概述 | 第18-19页 |
2 海参皂苷研究进展 | 第19-31页 |
·海参皂苷的分离制备及纯化 | 第20-23页 |
·海参皂苷的提取 | 第20-21页 |
·海参皂苷的分离纯化 | 第21-23页 |
·海参皂苷的生物学活性 | 第23-28页 |
·溶血活性(hemolytic activity) | 第23-24页 |
·细胞毒活性(cytotoxic activity) | 第24-25页 |
·抗肿瘤活性(antitumour activity) | 第25页 |
·抑菌活性(antimicrobial activity) | 第25-26页 |
·免疫调节活性(Immunoregulation activity) | 第26-27页 |
·Na+-K+-ATP酶活性抑制作用(Inhibition of Na+-K+-ATPase activity ) | 第27页 |
·抑制肿瘤新生血管的形成活性(anti-angiogenic activity) | 第27-28页 |
·海参皂苷的种类及化学构成 | 第28-31页 |
·海参烷型皂苷(holostane-type) | 第28-30页 |
·非海参烷型皂苷(non-hoiustane-type triterpene glycoside) | 第30-31页 |
3 海星皂苷研究进展 | 第31-33页 |
·多羟基甾体皂苷(polyhydroxysteroids glycosides) | 第32页 |
·环式甾体皂苷(Cycle steroid glycosides) | 第32-33页 |
·海星皂苷(Asterosaponins) | 第33页 |
4 本文研究的目的、实验设计、创新及意义 | 第33-37页 |
·本研究目的 | 第33-34页 |
·实验设计 | 第34页 |
·该课题主要创新点 | 第34-35页 |
·研究意义 | 第35-37页 |
·社会经济效益 | 第35页 |
·科研价值 | 第35-37页 |
第二章 水溶性海参总皂苷的提取分离及生物学活性研究 | 第37-68页 |
1 材料与方法 | 第38-46页 |
·材料 | 第38-40页 |
·实验用材料 | 第38页 |
·试剂 | 第38-39页 |
·仪器设备 | 第39-40页 |
·实验方法 | 第40-46页 |
·仿刺参水抽液的制备 | 第40页 |
·水溶性海参总皂苷的大孔树脂分离 | 第40页 |
·水溶性海参总皂苷的性质鉴定实验 | 第40-41页 |
·水溶性海参总皂苷抗真菌活性实验 | 第41-42页 |
·水溶性海参总皂苷体外抗肿瘤活性实验 | 第42-43页 |
·水溶性海参总皂苷体外抗氧化活性实验 | 第43-45页 |
·水溶性海参皂苷体外驱蝇活性实验 | 第45页 |
·正交设计优化从仿刺参废弃液中制备水溶性海参总皂苷的工艺 | 第45-46页 |
·数据处理 | 第46页 |
2 结果与分析 | 第46-58页 |
·水溶性海参总皂苷制品的性质鉴定 | 第46-47页 |
·抗真菌活性实验 | 第47-51页 |
·抑菌环测定结果 | 第47-50页 |
·供试真菌MIC 值的测定 | 第50-51页 |
·体外抗肿瘤活性实验 | 第51-53页 |
·细胞形态学观察 | 第51-53页 |
·癌细胞抑制率测定结果 | 第53页 |
·水溶性海参总皂苷体外抗氧化活性实验 | 第53-55页 |
·水溶性海参总皂苷的还原力 | 第53-54页 |
·水溶性海参总皂苷清除羟自由基的功能 | 第54-55页 |
·对邻苯三酚自氧化的抑制作用 | 第55页 |
·驱蝇活性实验结果 | 第55-56页 |
·仿刺参加工废弃液水溶性海参总皂苷制备工艺的正交实验 | 第56-58页 |
3 讨论 | 第58-66页 |
·水溶性海参总皂苷的提取 | 第58-61页 |
·水溶性海参总皂苷性质测定 | 第61页 |
·水溶性海参总皂苷的抑菌活性 | 第61-63页 |
·水溶性海参皂苷的体外抗肿瘤活性 | 第63页 |
·水溶性海参总皂苷抗氧化活性的研究 | 第63-64页 |
·水溶性海参总皂苷驱蝇活性 | 第64-65页 |
·冻干仿刺参废弃液中水溶性海参皂苷的工艺优化 | 第65-66页 |
4 结论 | 第66-68页 |
第三章 水溶性海参总皂苷的部分纯化及抗真菌抗肿瘤活性的跟踪筛选 | 第68-79页 |
1 材料与方法 | 第68-71页 |
·材料与试剂配制 | 第68-70页 |
·实验用样品 | 第68页 |
·试剂 | 第68-69页 |
·仪器设备 | 第69页 |
·几种常用试剂配方 | 第69-70页 |
·实验方法 | 第70-71页 |
·水溶性海参总皂苷的大孔树脂柱层析 | 第70页 |
·各乙醇洗脱组分的抗真菌活性筛选 | 第70-71页 |
·各乙醇洗脱组分的抗肿瘤活性筛选 | 第71页 |
·实验数据的统计学处理 | 第71页 |
2 实验结果 | 第71-77页 |
·大孔树脂柱层析各组分得量 | 第71-72页 |
·大孔树脂洗脱组分的抗真菌活性筛选结果 | 第72-75页 |
·大孔树脂乙醇洗脱组分抗肿瘤活性筛选 | 第75-77页 |
3 讨论 | 第77-78页 |
4 结论 | 第78-79页 |
第四章 水溶性海参皂苷的纯化及高抗真菌和抗肿瘤活性组分的筛选 | 第79-98页 |
1 材料与方法 | 第79-83页 |
·材料与试剂配制 | 第79-81页 |
·实验用样品 | 第79页 |
·试剂 | 第79-80页 |
·仪器设备 | 第80页 |
·展开剂与显色剂 | 第80-81页 |
·实验方法 | 第81-83页 |
·水溶性海参皂苷的硅胶柱层析 | 第81页 |
·水溶性海参皂苷的Sephadex LH-20 柱层析 | 第81页 |
·纯化组分的性质鉴定实验 | 第81页 |
·水溶性海参皂苷纯化样品的HPLC 纯度鉴定 | 第81-82页 |
·各层析组分的抗真菌活性实验 | 第82页 |
·各层析组分的抗肿瘤活性实验 | 第82-83页 |
·实验数据的统计学处理 | 第83页 |
2 实验结果 | 第83-93页 |
·大孔树脂 70%乙醇洗脱组分的硅胶柱层析图谱 | 第83-85页 |
·Sephadex LH-20 柱层析图谱 | 第85-86页 |
·纯化组分的性质鉴定结果 | 第86页 |
·水溶性海参皂苷纯化样品的纯度鉴定结果 | 第86-88页 |
·抗真菌活性 | 第88-90页 |
·纯化组分的抗真菌活性筛选结果 | 第88-90页 |
·纯化组分对供试真菌的MIC 测定结果 | 第90页 |
·抗肿瘤活性筛选 | 第90-93页 |
3 讨论 | 第93-97页 |
·水溶性海参皂苷的分离纯化 | 第94-95页 |
·抗真菌活性的筛选 | 第95-96页 |
·体外抗肿瘤活性筛选 | 第96-97页 |
4 结论 | 第97-98页 |
第五章 水溶性海参皂苷纯品SC-2 体内外抗肿瘤药理作用的实验研究 | 第98-117页 |
1 材料与方法 | 第98-104页 |
·材料 | 第98-101页 |
·实验用药物 | 第98页 |
·动物及瘤株 | 第98页 |
·仪器设备 | 第98-99页 |
·试剂 | 第99页 |
·几种重要试剂配方 | 第99-101页 |
·方法 | 第101-104页 |
·水溶性海参皂苷SC-2 体外抑瘤实验 | 第101页 |
·SC-2 诱导体外培养的HeLa 细胞凋亡的研究 | 第101-102页 |
·SC-2 对小鼠5180 移植瘤的抑制作用实验 | 第102-104页 |
·数据处理 | 第104页 |
2 结果 | 第104-112页 |
·SC-2 体外对HeLa 细胞的增殖作用 | 第104-107页 |
·MTT 检测结果 | 第104-105页 |
·SC-2 体外对HeLa 细胞的光镜观察 | 第105-106页 |
·SC-2 体外对HeLa 细胞的Giemsa 染色观察 | 第106-107页 |
·SC-2 诱导体外培养的HeLa 细胞凋亡 | 第107-109页 |
·SC-2 作用于HeLa 细胞荧光显微观察 | 第107-108页 |
·SC-2 作用于HeLa 细胞的DNA 琼脂糖凝胶电泳 | 第108-109页 |
·SC-2 抗肿瘤的动物实验 | 第109-112页 |
·SC-2 对荷瘤小鼠 S180 的抑制作用 | 第109-111页 |
·SC-2 对小鼠免疫器官的影响 | 第111-112页 |
3 讨论 | 第112-116页 |
·水溶性海参皂苷SC-2 体外抑制HeLa 细胞增殖作用 | 第112-113页 |
·水溶性海参皂苷SC-2 诱导HeLa 细胞凋亡的作用 | 第113-114页 |
·水溶性海参皂苷SC-2 的体内抗肿瘤作用 | 第114-116页 |
·SC-2 的抗肿瘤作用 | 第114-115页 |
·SC-2 对免疫器官指数的影响 | 第115-116页 |
4 结论 | 第116-117页 |
全文总结 | 第117-120页 |
参考文献 | 第120-129页 |
攻读博士学位期间发表及整理的专利和文章 | 第129-130页 |
致谢 | 第130页 |