| 英文缩略词表 | 第8-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一部分:熊果酸逆转乳腺癌紫杉醇耐药的作用 | 第16-38页 |
| 1 材料与方法 | 第16-28页 |
| 1.1 细胞株 | 第16页 |
| 1.2 实验动物 | 第16页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第16-17页 |
| 1.4 实验试剂及抗体 | 第17-18页 |
| 1.5 主要试剂的配制 | 第18-21页 |
| 1.6 乳腺癌231和231/PTX细胞的培养 | 第21-22页 |
| 1.7 细胞分组及处理 | 第22-23页 |
| 1.8 动物模型的建立及分组 | 第23页 |
| 1.9 CCK-8法检测细胞增殖抑制率 | 第23页 |
| 1.10 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第23-24页 |
| 1.11 荧光定量PCR | 第24-26页 |
| 1.12 Western blot | 第26-27页 |
| 1.13 瘤体体积及重量的测定 | 第27-28页 |
| 1.14 数据统计及处理 | 第28页 |
| 2 实验结果 | 第28-35页 |
| 2.1 乳腺癌紫杉醇耐药细胞株231/PTX耐药性的鉴定 | 第28-30页 |
| 2.2 熊果酸作用231/PTX细胞的药物浓度 | 第30-31页 |
| 2.3 熊果酸逆转231/PTX细胞对紫杉醇耐药的作用 | 第31-33页 |
| 2.4 熊果酸逆转裸鼠皮下移植瘤对紫杉醇耐药的作用 | 第33-35页 |
| 3 讨论和分析 | 第35-38页 |
| 第二部分:熊果酸促进miR-149-5p的表达逆转乳腺癌紫杉醇耐药 | 第38-49页 |
| 1 材料与方法 | 第38-40页 |
| 1.1 细胞株 | 第38页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第38页 |
| 1.3 实验试剂及抗体 | 第38页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第38页 |
| 1.5 实时荧光定量PCR | 第38-40页 |
| 1.6 数据统计及处理 | 第40页 |
| 2 实验结果 | 第40-47页 |
| 2.1 231/PTX细胞miR-149-5p的表达降低 | 第40-41页 |
| 2.2 熊果酸促进231/PTX细胞miR-149-5p的表达 | 第41页 |
| 2.3 过表达miR-149-5p增强231/PTX细胞对紫杉醇的敏感性 | 第41-43页 |
| 2.4 干扰miR-149-5p降低231细胞对紫杉醇的敏感性 | 第43-45页 |
| 2.5 干扰miR-149-5p降低熊果酸对231/PTX细胞紫杉醇耐药的逆转作用 | 第45-47页 |
| 3 讨论和分析 | 第47-49页 |
| 第三部分:熊果酸调控miR-149-5p逆转乳腺癌紫杉醇耐药的分子机制 | 第49-60页 |
| 1 材料与方法 | 第49-50页 |
| 1.1 细胞株 | 第49页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第49页 |
| 1.3 实验试剂及抗体 | 第49页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第49页 |
| 1.5 CCK-8法检测细胞增殖抑制率 | 第49页 |
| 1.6 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第49页 |
| 1.7 荧光定量PCR | 第49页 |
| 1.8 Western blot | 第49页 |
| 1.9 数据统计及处理 | 第49页 |
| 1.10 双荧光素酶报告基因检测 | 第49-50页 |
| 2 实验结果 | 第50-58页 |
| 2.1 231/PTX细胞中MyD88表达水平上升 | 第50页 |
| 2.2 miR-149-5p靶向调节MyD88的表达 | 第50-52页 |
| 2.3 干扰MyD88增强231/PTX细胞对紫杉醇的敏感性 | 第52-54页 |
| 2.4 MyD88通过PI3K/Akt信号通路介导乳腺癌紫杉醇的耐药 | 第54-55页 |
| 2.5 熊果酸降低231/PTX细胞中MyD88的表达 | 第55-56页 |
| 2.6 过表达MyD88降低熊果酸对231/PTX细胞紫杉醇耐药的逆转作用 | 第56-58页 |
| 3 讨论和分析 | 第58-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 附录1 文献综述 髓样分化因子88在肿瘤中的作用机制 | 第68-75页 |
| 参考文献 | 第71-75页 |
| 附录2 发表文章目录 | 第75页 |
