摘要 | 第1-11页 |
ABSTRACT | 第11-15页 |
第一章 文献综述 | 第15-37页 |
1.1 尼古丁及其理化特性 | 第15-16页 |
1.2 尼古丁的污染现状 | 第16-19页 |
1.2.1 烟草生产及其污染 | 第16-18页 |
1.2.2 烟碱型农药的推广及其环境影响 | 第18-19页 |
1.3 尼古丁的毒理学研究进展 | 第19-26页 |
1.3.1 尼古丁对氧化应激的影响 | 第20-21页 |
1.3.2 尼古丁对细胞凋亡的影响 | 第21-22页 |
1.3.3 尼古丁对细胞增殖的影响 | 第22页 |
1.3.4 尼古丁对基因的潜在毒害 | 第22-23页 |
1.3.5 尼古丁对基因表达的影响 | 第23页 |
1.3.6 尼古丁对内分泌系统的影响 | 第23-24页 |
1.3.7 尼古丁对映体的区别 | 第24-25页 |
1.3.8 尼古丁和上瘾 | 第25页 |
1.3.9 尼古丁的有益影响 | 第25-26页 |
1.4 尼古丁的微生物降解研究概述 | 第26-35页 |
1.4.1 烟草中尼古丁的微生物降解研究进展 | 第26-28页 |
1.4.2 烟草废弃物中尼古丁的微生物降解研究 | 第28-30页 |
1.4.3 尼古丁的微生物降解途径研究 | 第30-35页 |
1.5 研究的目的、意义及主要内容 | 第35-37页 |
1.5.1 研究的目的和意义 | 第35-36页 |
1.5.2 研究的主要内容 | 第36-37页 |
第二章 尼古丁污染对菜地土壤微生物学特性影响的研究 | 第37-46页 |
2.1 引言 | 第37-38页 |
2.2 材料与方法 | 第38-39页 |
2.2.1 供试土壤 | 第38页 |
2.2.2 土壤养分的测定与方法 | 第38页 |
2.2.3 土壤微生物区系测定 | 第38-39页 |
2.2.3.1 试验设计 | 第38-39页 |
2.2.3.2 计数微生物基础培养基组成与测定方法 | 第39页 |
2.2.3 土壤微生物活性测定 | 第39页 |
2.3 结果与分析 | 第39-44页 |
2.3.1 土壤理化性质的测定 | 第39页 |
2.3.2 尼古丁污染对土壤可培养好氧微生物区系的影响 | 第39-40页 |
2.3.3 尼古丁污染与土壤微生物活性的关系 | 第40-44页 |
2.4 小结 | 第44-46页 |
第三章 尼古丁污染对土壤酶活性影响的研究 | 第46-54页 |
3.1 引言 | 第46页 |
3.2 材料与方法 | 第46-48页 |
3.2.1 供试土壤 | 第46页 |
3.2.2 试验设计与实施 | 第46页 |
3.2.3 土壤酶活性测定方法 | 第46-48页 |
3.2.3.1 过氧化氢酶活性的测定 | 第46-47页 |
3.2.3.2 脲酶活性的测定 | 第47页 |
3.2.3.3 磷酸酶活性的测定 | 第47页 |
3.2.3.4 蛋白酶活性的测定 | 第47-48页 |
3.2.4.数据分析 | 第48页 |
4.3 结果与分析 | 第48-53页 |
4.3.1 尼古丁污染对土壤蛋白酶活性的影响 | 第48-49页 |
3.3.2 尼古丁污染对土壤脲酶活性的影响 | 第49-50页 |
3.3.3 尼古丁污染对土壤过氧化氢酶活性的影响 | 第50-51页 |
3.3.4 尼古丁污染对土壤磷酸酶活性的影响 | 第51-53页 |
3.4 小结 | 第53-54页 |
第四章 尼古丁污染对菜地土壤微生物群落结构影响的PCR-DGGE分子指纹分析 | 第54-70页 |
4.1 引言 | 第54页 |
4.2 材料与方法 | 第54-57页 |
4.2.1 供试土壤 | 第54页 |
4.2.2 试验设计与实施 | 第54-55页 |
4.2.3 土壤总DNA的提取方法 | 第55页 |
4.2.4 PCR扩增 | 第55-57页 |
4.2.5 变性梯度凝胶电泳(DGGE) | 第57页 |
4.2.6 染色 | 第57页 |
4.2.7 指纹图谱生物信息学分析 | 第57页 |
4.3 结果与分析 | 第57-68页 |
4.3.1 土壤总DNA的提取以及细菌16S rDNA及特征性片段的PCR扩增 | 第57-58页 |
4.3.2 尼古丁污染对土壤细菌分子生态影响的浓度效应 | 第58-65页 |
4.3.2.1 起始土样的细菌种群差异分析 | 第58-60页 |
4.3.2.2 尼古丁污染浓度与土壤细菌种群变化间的关系 | 第60-65页 |
4.3.3 尼古丁污染对土壤细菌种群变化影响的时间效应 | 第65-68页 |
4.4 小结 | 第68-70页 |
第五章 烟焦油的微生物降解研究 | 第70-80页 |
5.1 引言 | 第70-71页 |
5.2 材料与方法 | 第71-73页 |
5.2.1 烟焦油降解菌的分离、鉴定与系统发育分析 | 第71-72页 |
5.2.1.1 实验材料 | 第71页 |
5.2.1.2 实验方法 | 第71-72页 |
5.2.2 MR4菌株降解烟焦油的初步研究 | 第72-73页 |
5.2.2.1 菌株最佳降解条件试验 | 第72页 |
5.2.2.2 MR4菌株对烟焦油的降解 | 第72-73页 |
5.3 结果与分析 | 第73-79页 |
5.3.1 MR4菌的形态学观察与分析 | 第73页 |
5.3.2 MR4菌的生理生化特征 | 第73-74页 |
5.3.3 MR4菌株的16S rDNA序列测定与系统发育分析 | 第74-75页 |
5.3.4 MR4菌株在焦油无机盐中的最佳生长条件 | 第75-76页 |
5.3.4.1 MR4菌株最适生长DH值 | 第75-76页 |
5.3.4.2 菌株的最适生长温度 | 第76页 |
5.3.5 MR4菌株的生长对培养液pH值变化的影响 | 第76页 |
5.3.6 GC-MS系统分析MR4菌对烟焦油成分的降解 | 第76-79页 |
6.3 小结 | 第79-80页 |
第六章 尼古丁高效降解菌的分离、鉴定与系统发育分析 | 第80-92页 |
6.1 引言 | 第80页 |
6.2 材料与方法 | 第80-83页 |
6.2.1 分离源 | 第80-81页 |
6.2.2 实验试剂 | 第81页 |
6.2.3 主要仪器 | 第81页 |
6.2.4 培养基 | 第81页 |
6.2.5 试验方法 | 第81-83页 |
6.2.5.1 尼古丁降解菌的富集、分离和纯化 | 第81-82页 |
6.2.5.2 形态学观察 | 第82页 |
6.2.5.3 生理生化试验 | 第82页 |
6.2.5.4 碳源利用的Biolog分析 | 第82页 |
6.2.5.5 菌株的基因组成 | 第82页 |
6.2.5.6 16S rDNA的PCR扩增和序列测定 | 第82-83页 |
6.2.5.6 序列比对和基于16S rDNA的系统发育分析 | 第83页 |
6.3 结果与分析 | 第83-91页 |
6.3.1 菌株的形态学特征 | 第83-84页 |
6.3.2.菌株的生理生化特征 | 第84-86页 |
6.3.3.菌株的基因组成 | 第86页 |
6.3.4 菌株的Biolog鉴定 | 第86页 |
6.3.5 分离菌株16S rDNA的序列测定与系统发育分析 | 第86-91页 |
6.4 小结 | 第91-92页 |
第七章 尼古丁降解菌的降解特性研究 | 第92-107页 |
7.1 引言 | 第92-93页 |
7.2 材料与方法 | 第93-95页 |
7.2.1 供试菌株 | 第93页 |
7.2.2 主要试剂 | 第93页 |
7.2.3 主要仪器 | 第93页 |
7.2.4 主要培养基 | 第93页 |
7.2.5 培养条件对菌株生长及其尼古丁降解的影响 | 第93-94页 |
7.2.5.1 分析检测方法 | 第93-94页 |
7.2.5.2 尼古丁浓度对菌株生长的影响 | 第94页 |
7.2.5.3 温度与pH值对菌株生长和降解的影响 | 第94页 |
7.2.6 降解动力学实验 | 第94-95页 |
7.2.7 HF-2菌株尼古丁代谢中间产物的测定及其代谢途径的推测 | 第95页 |
7.2.7.1 样品处理 | 第95页 |
7.2.7.2 利用GC/MS检测代谢中间产物 | 第95页 |
7.3 结果与分析 | 第95-105页 |
7.3.1 尼古丁浓度对菌株生长的影响 | 第95-97页 |
7.3.3 温度和pH值对菌株HF-2生长及尼古丁降解的影响 | 第97-99页 |
7.3.4 尼古丁降解菌降解尼古丁的动力学特征 | 第99-102页 |
7.3.5 菌株HF-2降解尼古丁代谢中间产物的测定 | 第102-105页 |
7.4 小结 | 第105-107页 |
第八章 论文总结 | 第107-111页 |
8.1 论文的主要研究结论 | 第107-109页 |
8.2 论文的创新之处 | 第109页 |
8.3 论文的不足与展望 | 第109-111页 |
参考文献 | 第111-125页 |
攻读博士期间论文撰写与发表及获奖情况 | 第125-126页 |
致谢 | 第126页 |