鱼藤组织培养与鱼藤素提取分离的研究
摘要 | 第1-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
第一章 绪论 | 第11-19页 |
·鱼藤 | 第11-12页 |
·鱼藤的概述 | 第11页 |
·鱼藤的形态特征 | 第11页 |
·鱼藤的自然分布 | 第11-12页 |
·植物组织培养的研究现状 | 第12-13页 |
·豆科植物组织培养的研究现状 | 第12-13页 |
·鱼藤组织培养的研究现状 | 第13页 |
·鱼藤素 | 第13-17页 |
·鱼藤酮类化合物 | 第13-14页 |
·鱼藤素提取、分离的研究现状 | 第14-15页 |
·鱼藤素药理活性的研究现状 | 第15-16页 |
·鱼藤素生物活性的研究现状 | 第16-17页 |
·鱼藤素稳定性及合成的研究现状 | 第17页 |
·本文研究内容 | 第17页 |
·本项目研究的目的和意义 | 第17-19页 |
第二章 鱼藤愈伤组织离体培养 | 第19-31页 |
·实验材料和仪器 | 第19页 |
·实验材料 | 第19页 |
·实验仪器 | 第19页 |
·实验方法 | 第19-22页 |
·培养基的制备 | 第19-21页 |
·MS 基本培养基母液的配制 | 第19-20页 |
·植物生长调节剂母液的配制 | 第20页 |
·培养基的配制 | 第20-21页 |
·组织培养 | 第21-22页 |
·外植体的灭菌 | 第21页 |
·组织培养 | 第21-22页 |
·结果与分析 | 第22-30页 |
·灭菌溶剂及灭菌时间对组培的影响 | 第22-24页 |
·PH 值对组培的影响 | 第24页 |
·植物生长调节剂对鱼藤茎组培的影响 | 第24-27页 |
·激素浓度对组培的影响 | 第24-27页 |
·生长激素的选择 | 第27页 |
·植物生长调节剂对鱼藤叶组培的影响 | 第27-29页 |
·激素浓度对组培的影响 | 第27-29页 |
·鱼藤叶愈伤组织生长激素的选择 | 第29页 |
·愈伤组织的生长曲线 | 第29-30页 |
·小结 | 第30-31页 |
第三章 愈伤组织中鱼藤素的提取和分离 | 第31-44页 |
·实验材料和仪器 | 第31页 |
·实验材料 | 第31页 |
·实验仪器 | 第31页 |
·实验方法 | 第31-32页 |
·鱼藤素的提取 | 第31-32页 |
·浸渍提取 | 第31-32页 |
·超声波辅助浸提 | 第32页 |
·索氏提取 | 第32页 |
·鱼藤素的分离 | 第32-33页 |
·柱层析 | 第32页 |
·薄层层析 | 第32页 |
·HPLC 检测 | 第32-33页 |
·结果与分析 | 第33-42页 |
·提取时间对鱼藤素提取的影响 | 第33-34页 |
·超声波辅助浸提时间的选择 | 第33页 |
·振荡提取时间选择 | 第33-34页 |
·提取方法对鱼藤素提取的影响 | 第34页 |
·愈伤组织中鱼藤素的检测 | 第34-36页 |
·愈伤组织中鱼藤素的累积量 | 第36页 |
·愈伤组织与鱼藤各个部位中鱼藤素含量的比较 | 第36-37页 |
·柱层析分离结果 | 第37-40页 |
·薄层层析分离结果 | 第40-42页 |
·小结 | 第42-44页 |
第四章 鱼藤素的还原衍生 | 第44-53页 |
·实验材料与仪器 | 第44页 |
·实验材料 | 第44页 |
·实验仪器 | 第44页 |
·实验方法 | 第44-45页 |
·样品的准备 | 第45页 |
·HPLC 检测 | 第45页 |
·实验结果与分析 | 第45-52页 |
·反应温度对还原衍生的影响 | 第45-46页 |
·反应时间对还原衍生的影响 | 第46-48页 |
·反应试剂对还原衍生的影响 | 第48-49页 |
·碱性条件对反应的影响 | 第49-52页 |
·小结 | 第52-53页 |
第五章 全文总结 | 第53-55页 |
·总结 | 第53页 |
·本论文的创新点 | 第53页 |
·本论文待解决的问题及展望 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-61页 |
附录 | 第61-65页 |
致谢 | 第65页 |