| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略词 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-19页 |
| 1 大豆功能基因的发掘方法 | 第12-14页 |
| 1.1 基于遗传作图以及图位克隆技术进行新基因的发掘 | 第12-13页 |
| 1.2 基于突变体突变位点定位大豆功能基因 | 第13-14页 |
| 1.3 基于全基因组关联分析(GWAS)定位功能基因 | 第14页 |
| 2 大豆叶片黄化突变体的研究进展 | 第14-18页 |
| 3 研究目的及意义 | 第18-19页 |
| 第二章 大豆EMS诱变突变体的筛选及鉴定 | 第19-24页 |
| 1 实验材料和方法 | 第19页 |
| 1.1 材料种植 | 第19页 |
| 1.2 实验材料和仪器 | 第19页 |
| 1.3 I_2-KI花粉染色法 | 第19页 |
| 2 实验结果与分析 | 第19-23页 |
| 2.1 大豆叶形及叶色突变体的筛选鉴定 | 第19-20页 |
| 2.2 大豆育性相关突变体的筛选鉴定 | 第20-21页 |
| 2.3 大豆种子突变体的筛选鉴定 | 第21-22页 |
| 2.4 图位克隆群体构建 | 第22-23页 |
| 3 讨论 | 第23-24页 |
| 第三章 大豆叶黄化突变体gmyld1的遗传特点与表型分析 | 第24-35页 |
| 1 实验材料和方法 | 第24-28页 |
| 1.1 材料种植 | 第24页 |
| 1.2 实验材料和仪器 | 第24页 |
| 1.3 叶绿素及类胡萝卜素含量的测定(分光光度法) | 第24-25页 |
| 1.4 叶绿素合成中间产物含量的测定 | 第25-26页 |
| 1.5 净光合速率测定 | 第26页 |
| 1.6 叶绿体显微透射观察 | 第26-28页 |
| 2 实验结果与分析 | 第28-33页 |
| 2.1 黄化突变体gmyldl (Glycine max yellow leafchlorophylldeficient 1)鉴定及遗传分析 | 第28-29页 |
| 2.2 gmyld1叶绿素含量及其合成相关基因表达变化 | 第29-33页 |
| 3 讨论 | 第33-35页 |
| 第四章 大豆叶黄化突变体gmyld1的基因定位及克隆 | 第35-70页 |
| 1 实验材料和方法 | 第35-41页 |
| 1.1 材料种植 | 第35页 |
| 1.2 实验材料和仪器 | 第35页 |
| 1.3 DNA样品制备(CTAB提取大豆叶片DNA法) | 第35-36页 |
| 1.4 PCR扩增 | 第36-37页 |
| 1.5 克隆基因片段的纯化回收(天根试剂盒) | 第37页 |
| 1.6 电泳缓冲液配制 | 第37-38页 |
| 1.7 关联分析方法 | 第38-39页 |
| 1.8 indel和dCAPs分子标记开发及其多态性鉴定 | 第39页 |
| 1.9 植物总RNA的提取 | 第39-40页 |
| 1.10 RNA的反转录 | 第40-41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-68页 |
| 2.1 利用BSA-seq定位Gmyld1突变位点的候选区域 | 第41-48页 |
| 2.2 分子标记筛选及物理图谱构建 | 第48-50页 |
| 2.3 大豆黄化突变体gmyld1突变基因定位 | 第50-52页 |
| 2.4 大豆调控叶色的候选基因GmYLD1克隆与序列特征分析 | 第52-59页 |
| 2.5 gmyld1转录组测序分析 | 第59-68页 |
| 2.6 大豆叶色调控基因GmYLD1表达模式分析 | 第68页 |
| 3 讨论 | 第68-70页 |
| 本研究的创新之处 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-75页 |
| 附录 | 第75-82页 |
| 致谢 | 第82-84页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第84页 |
