| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 研究现状、成果 | 第13-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-16页 |
| 一、 H19参与肿瘤相关巨噬细胞促进HCC侵袭转移 | 第16-45页 |
| 1.1 对象和方法 | 第17-29页 |
| 1.1.1 病例及标本来源 | 第17页 |
| 1.1.2 细胞系 | 第17页 |
| 1.1.3 免疫组织化学染色试剂 | 第17-18页 |
| 1.1.4 细胞培养试剂 | 第18页 |
| 1.1.5 细胞功能实验试剂 | 第18页 |
| 1.1.6 荧光实时定量PCR实验试剂 | 第18页 |
| 1.1.7 细胞成球实验试剂 | 第18-19页 |
| 1.1.8 流式细胞术实验试剂 | 第19页 |
| 1.1.9 质粒扩增、提取和转染实验 | 第19页 |
| 1.1.10 芯片检测试剂 | 第19页 |
| 1.1.11 人基因组U133基因芯片检测实验 | 第19-21页 |
| 1.1.12 免疫组化染色实验操作流程及结果判定 | 第21-22页 |
| 1.1.13 实时荧光定量PCR实验 | 第22-25页 |
| 1.1.14 平板克隆实验 | 第25页 |
| 1.1.15 AnnexinV凋亡实验 | 第25-26页 |
| 1.1.16 划痕修复实验 | 第26页 |
| 1.1.17 Transwell侵袭实验 | 第26-27页 |
| 1.1.18 流式细胞术 | 第27页 |
| 1.1.19 体外成球实验 | 第27-28页 |
| 1.1.20 质粒扩增、提取和转染实验 | 第28-29页 |
| 1.2 结果 | 第29-42页 |
| 1.2.1 生物信息学分析H19与TAMs浸润之间的相关性 | 第29-32页 |
| 1.2.2 在HCC组织中H19与TAMs浸润、EMT和临床病理指标之间的相关性 | 第32-34页 |
| 1.2.3 活化的TAMs对HCC细胞H19表达的影响 | 第34-35页 |
| 1.2.4 活化的TAMs对HCC细胞增殖和凋亡的影响 | 第35-36页 |
| 1.2.5 活活化的TAMs对HCC细胞侵袭转移的影响 | 第36-38页 |
| 1.2.6 活化的TAMs对HCC干性特征的影响 | 第38-41页 |
| 1.2.7 HCC细胞高表达H19后对其侵袭转移和干性的影响 | 第41-42页 |
| 1.3 讨论 | 第42-44页 |
| 1.4 小结 | 第44-45页 |
| 二、H19介导的TAMs促进HCC细胞侵袭转移的机制探讨 | 第45-63页 |
| 2.1 对象和方法 | 第45-53页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第45页 |
| 2.1.2 细胞培养试剂 | 第45-46页 |
| 2.1.3 荧光实时定量PCR实验试剂 | 第46页 |
| 2.1.4 WesternBlot实验试剂 | 第46页 |
| 2.1.5 芯片检测试剂 | 第46页 |
| 2.1.6 荧光素酶报告基因实验试剂 | 第46-47页 |
| 2.1.7 人基因组U133基因芯片检测试验 | 第47页 |
| 2.1.8 实时荧光定量PCR实验 | 第47-48页 |
| 2.1.9 WesternBlot | 第48-52页 |
| 2.1.10 荧光素酶报告基因实验 | 第52-53页 |
| 2.2 结果 | 第53-60页 |
| 2.2.1 生物信息学分析提示H19-miR193b-MAPK调节轴的存在 | 第53-54页 |
| 2.2.2 活化的TAMs对HCC中miR193b及其下游靶基因的影响…… | 第54-57页 |
| 2.2.3 H19高表达对HCC细胞miR193b及其下游靶基因的影响…… | 第57-58页 |
| 2.2.4 荧光素酶报告基因实验证实H19-miR193b-MAPK调节轴的存在 | 第58-59页 |
| 2.2.5 活化的TAMs对HCCEMT发生的影响 | 第59-60页 |
| 2.2.6 活化的TAMs对HCC干性基因转录的影响 | 第60页 |
| 2.3 讨论 | 第60-62页 |
| 2.4 小结 | 第62-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-68页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69-71页 |
| 综述 | 第71-90页 |
| 综述参考文献 | 第82-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 个人简历 | 第91页 |
