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氨基糖苷类抗生素耳毒性过程中的自噬现象

中文摘要第6-7页
Abstract第7-8页
英文缩写及名词对照第9-10页
一 背景介绍第10-14页
    参考文献第12-14页
二 实验部分第14-38页
    1、引言第14页
    2、实验仪器和材料第14-15页
        2.1 实验仪器第14-15页
        2.2 实验材料第15页
    3、实验方法第15-24页
        3.1 耳蜗的分离及培养第15-17页
            3.1.1 Millicell细胞插入皿中PET滤膜的包被及培养液的配制第15页
            3.1.2 耳蜗取材及培养第15-16页
            3.1.3 PET滤膜在耳蜗基底膜培养中的应用第16-17页
        3.2 免疫荧光分析第17页
        3.3 毛细胞计数分析(耳蜗损伤图的制作)第17-18页
        3.4 透射电镜分析第18-19页
        3.5 扫描电镜分析第19页
        3.6 Western blot第19-22页
            3.6.1 基础试剂的配制第19页
            3.6.2 组织蛋白提取第19-20页
            3.6.3 配胶第20页
            3.6.4 电泳第20-21页
            3.6.5 转膜(湿法转膜)第21-22页
            3.6.6 免疫标记,显影第22页
        3.7 免疫共沉淀第22-24页
            3.7.1 基础试剂第22-23页
            3.7.2 操作流程第23-24页
        3.8 统计分析第24页
    4、实验结果第24-28页
        4.1 透射电镜观察庆大霉素作用后的自噬体结构第24-25页
        4.2 3-MA干预自噬后对GM导致的耳毒性产生的影响第25-27页
        4.3 扫描电镜结果第27页
        4.4 应用庆大霉素之后LC3蛋白表达上调第27-28页
        4.5 Atg12和Bcl-2相互作用影响凋亡第28页
    5、讨论第28-34页
        5.1 氨基糖苷类抗生素的耳毒性概述第28-30页
        5.2 自噬和凋亡的关系第30-31页
        5.3 自噬概述第31-33页
        5.4 小结与展望第33-34页
    参考文献第34-38页
文献综述第38-42页
    参考文献第41-42页
三 硕士期间发表文章、奖励及会议报告第42-43页
致谢第43-46页

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