摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩略表 | 第10-12页 |
引言 | 第12-14页 |
第1章 实验研究 | 第14-58页 |
1.1 实验材料 | 第14-21页 |
1.1.1 细胞株 | 第14页 |
1.1.2 组织标本 | 第14页 |
1.1.3 主要试剂 | 第14-16页 |
1.1.4 主要仪器设备 | 第16页 |
1.1.5 主要试剂配制 | 第16-21页 |
1.2 实验方法 | 第21-41页 |
1.2.1 MCF-7 细胞和HBL-100细胞Mfn2 mRNA水平检测 | 第21-25页 |
1.2.2 乳腺癌和癌旁组织Mfn2 mRNA水平检测 | 第25-26页 |
1.2.3 MCF-7 细胞和HBL-100细胞Mfn2基因甲基化状态检测 | 第26-31页 |
1.2.4 乳腺癌和癌旁组织Mfn2基因甲基化状态检测 | 第31-32页 |
1.2.5 5-aza-CdR对MCF-7 细胞Mfn2基因甲基化的影响 | 第32-34页 |
1.2.6 5-aza-CdR对MCF-7 细胞Mfn2 mRNA表达水平的影响 | 第34-35页 |
1.2.7 5-aza-CdR对MCF-7 细胞Mfn2蛋白表达水平的影响 | 第35-39页 |
1.2.8 5-aza-CdR对MCF-7 细胞生物学特性的影响 | 第39-41页 |
1.3 实验结果 | 第41-51页 |
1.3.1 MCF-7 和HBL-100细胞中Mfn2 mRNA表达水平 | 第41-42页 |
1.3.2 乳腺癌和癌旁组织中Mfn2 mRNA表达水平 | 第42-43页 |
1.3.3 MCF-7 和HBL-100细胞中Mfn2基因甲基化状态 | 第43页 |
1.3.4 乳腺癌和癌旁组织中Mfn2基因甲基化状态 | 第43-44页 |
1.3.5 5-aza-CdR对MCF-7 细胞中Mfn2启动子区甲基化的影响 | 第44-45页 |
1.3.6 5-aza-CdR对MCF-7 细胞中Mfn2 mRNA表达的影响 | 第45-47页 |
1.3.7 5-aza-CdR对MCF-7 细胞中Mfn2蛋白表达的影响 | 第47-49页 |
1.3.8 MTT法检测 5-aza-CdR对MCF-7 细胞增殖的影响 | 第49页 |
1.3.9 流式细胞术检测 5-aza-CdR对MCF-7 细胞周期的影响 | 第49-51页 |
1.3.10 5-aza-CdR对MCF-7 细胞形态学变化的影响 | 第51页 |
1.4 实验讨论 | 第51-54页 |
参考文献 | 第54-58页 |
第2章 综述 DNA甲基化与乳腺癌关系的研究进展 | 第58-73页 |
2.1 DNA甲基化 | 第58-59页 |
2.2 DNA甲基化和乳腺癌相关基因 | 第59-65页 |
2.2.1 ER基因 | 第59页 |
2.2.2 PR基因 | 第59-60页 |
2.2.3 p16基因 | 第60-61页 |
2.2.4 APC基因 | 第61页 |
2.2.5 RASSF1A基因 | 第61页 |
2.2.6 BRCA1基因 | 第61-62页 |
2.2.7 ATM基因 | 第62-63页 |
2.2.8 CDH1基因 | 第63页 |
2.2.9 NOEY2基因 | 第63页 |
2.2.10 TIMP3基因 | 第63-64页 |
2.2.11 WWOX基因 | 第64页 |
2.2.12 1433R基因 | 第64-65页 |
2.3 DNA甲基化对乳腺癌的临床意义 | 第65-67页 |
2.3.1 DNA甲基化和乳腺癌诊断 | 第65-66页 |
2.3.2 DNA甲基化和乳腺癌治疗 | 第66页 |
2.3.3 DNA甲基化和乳腺癌预后 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-73页 |
结论 | 第73-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
导师简介 | 第75-78页 |
作者简介 | 第78-79页 |
学位论文数据集 | 第79页 |