摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第1章 前言 | 第11-33页 |
1.1 细胞凋亡在正常生命活动中的作用 | 第11页 |
1.2 细胞凋亡在疾病发生发展及疾病诊疗过程中的作用 | 第11-15页 |
1.3 细胞凋亡的主要信号通路 | 第15-16页 |
1.4 凋亡标志及体外凋亡探针 | 第16-20页 |
1.4.1 磷脂酰丝氨酸检测 | 第17-18页 |
1.4.2 Caspase-3活性检测 | 第18页 |
1.4.3 DNA片段和形态学研究 | 第18-19页 |
1.4.4 线粒体变化检测 | 第19页 |
1.4.5 热休克蛋白家族与细胞凋亡 | 第19-20页 |
1.5 体内凋亡成像策略 | 第20-24页 |
1.5.1 基于Annexin V的体内凋亡成像 | 第20-21页 |
1.5.2 基于Caspase-3活性检测的体内凋亡成像 | 第21-23页 |
1.5.3 小分子成像 | 第23-24页 |
1.6 本课题的研究意义和研究思路 | 第24-26页 |
参考文献 | 第26-33页 |
第2章 材料、仪器设备和实验方法 | 第33-47页 |
2.1 主要材料和试剂 | 第33-34页 |
2.2 主要实验耗材和仪器设备 | 第34-35页 |
2.2.1 主要实验耗材 | 第34页 |
2.2.2 主要仪器设备 | 第34-35页 |
2.3 实验方法 | 第35-46页 |
2.3.1 细胞培养 | 第35-36页 |
2.3.2 多肽结合力的筛选 | 第36页 |
2.3.3 细胞凋亡诱导方式及凋亡检测方法 | 第36-37页 |
2.3.4 细胞凋亡现象的验证 | 第37页 |
2.3.5 流式细胞术检测多肽标记凋亡细胞情况 | 第37-38页 |
2.3.6 激光共聚焦显微镜观测多肽标记凋亡细胞情况 | 第38页 |
2.3.7 酶标仪检测多肽标记凋亡细胞情况 | 第38页 |
2.3.8 多肽结合量影响因素的考察 | 第38页 |
2.3.9 流式细胞术检测P17与不同凋亡时期标志物共染色情况 | 第38-39页 |
2.3.10 Pull-down实验与质谱鉴定 | 第39-40页 |
2.3.11 多肽结合靶蛋白的验证 | 第40-41页 |
2.3.12 多肽在环磷酰胺诱导小鼠肿瘤凋亡模型中的凋亡成像 | 第41-43页 |
2.3.13 多肽在急性心肌损伤小鼠模型中的凋亡成像 | 第43-44页 |
2.3.14 体内代谢 | 第44页 |
2.3.15 细胞水平安全性评价 | 第44-45页 |
2.3.16 体内安全性评价 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-47页 |
第3章 功能多肽体外结合力筛选及优化 | 第47-54页 |
3.1 功能多肽的细胞结合力筛选 | 第47-51页 |
3.2 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-54页 |
第4章 P17细胞水平凋亡成像的研究 | 第54-72页 |
4.1 P17结合凋亡细胞的验证 | 第54-58页 |
4.2 P17结合的影响因素与结合特性 | 第58-63页 |
4.3 流式细胞术检测P17结合凋亡细胞情况 | 第63-65页 |
4.4 激光共聚焦显微镜观察P17结合凋亡细胞情况 | 第65-69页 |
4.5 酶标仪法检测P17结合凋亡细胞情况 | 第69-71页 |
参考文献 | 第71-72页 |
第5章 P17与凋亡细胞结合机理研究 | 第72-80页 |
5.1 P17结合靶蛋白的探究 | 第72-74页 |
5.2 P17结合靶蛋白的验证 | 第74-79页 |
参考文献 | 第79-80页 |
第6章 P17体内凋亡成像的研究 | 第80-95页 |
6.1 P17对小鼠肿瘤组织中凋亡区域的成像研究 | 第80-87页 |
6.2 P17对小鼠凋亡心肌组织的成像研究 | 第87-92页 |
6.3 P17体内代谢的初步研究 | 第92-94页 |
参考文献 | 第94-95页 |
第7章 P17细胞毒性及体内安全性评价 | 第95-100页 |
参考文献 | 第99-100页 |
第8章 讨论 | 第100-103页 |
参考文献 | 第102-103页 |
第9章 结论与展望 | 第103-105页 |
9.1 结论 | 第103-104页 |
9.2 展望 | 第104-105页 |
附录1-非论文综述 | 第105-114页 |
参考文献 | 第111-114页 |
附录2-研究生期间发表的论文 | 第114-115页 |
致谢 | 第115-118页 |
基金资助 | 第118页 |