摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7页 |
第一章 引言 | 第12-22页 |
1.1 弓形虫病概述 | 第12-16页 |
1.1.1 病原学 | 第12页 |
1.1.2 弓形虫的生活史 | 第12-14页 |
1.1.3 弓形虫各期形态特征 | 第14页 |
1.1.4 流行病学 | 第14-15页 |
1.1.5 临床症状和病理变化 | 第15页 |
1.1.6 弓形虫感染与天然免疫的相关性 | 第15-16页 |
1.2 巨噬细胞概述 | 第16-21页 |
1.2.1 天然免疫 | 第16-17页 |
1.2.2 巨噬细胞 | 第17页 |
1.2.3 巨噬细胞极化 | 第17-18页 |
1.2.4 巨噬细胞极化相关的信号通路 | 第18-19页 |
1.2.5 巨噬细胞极化与疾病的相关性 | 第19-21页 |
1.3 研究背景与目的 | 第21-22页 |
第二章 小鼠骨髓来源巨噬细胞体外极化模型的建立 | 第22-34页 |
2.1 材料和方法 | 第22-28页 |
2.1.1 实验动物 | 第22页 |
2.1.2 主要试剂和仪器设备 | 第22页 |
2.1.3 小鼠骨髓来源巨噬细胞的提取和诱导 | 第22-23页 |
2.1.4 流式细胞术鉴定骨髓来源巨噬细胞的纯度 | 第23页 |
2.1.5 骨髓来源巨噬细胞体外极化刺激处理 | 第23页 |
2.1.6 半定量PCR测定极化相关因子mRNA表达水平 | 第23-25页 |
2.1.7 Western blot检测极化标记分子蛋白表达水平 | 第25-26页 |
2.1.8 流式细胞术鉴定M1型和M2型极化相关分子 | 第26-27页 |
2.1.9 细胞上清中NO含量的测定 | 第27页 |
2.1.10 Arginase-1 活性试验 | 第27-28页 |
2.1.11 统计学分析 | 第28页 |
2.2 结果 | 第28-33页 |
2.2.1 骨髓来源巨噬细胞纯度的鉴定 | 第28页 |
2.2.2 极化的巨噬细胞光学显微镜下形态变化 | 第28-29页 |
2.2.3 不同亚型巨噬细胞超微结构的差异 | 第29-30页 |
2.2.4 半定量PCR鉴定巨噬细胞的极化状态 | 第30页 |
2.2.5 流式细胞术检测细胞表面标记分子CD80和CD206的表达水平 | 第30-31页 |
2.2.6 iNOS和Arginase-1 酶活性的测定 | 第31-32页 |
2.2.7 iNOS和Arginase-1 蛋白含量的直接测定 | 第32-33页 |
2.3 讨论 | 第33-34页 |
第三章 弓形虫感染对巨噬细胞极化的影响 | 第34-41页 |
3.1 材料和方法 | 第34-36页 |
3.1.1 虫株和实验动物 | 第34页 |
3.1.2 主要试剂和仪器设备 | 第34页 |
3.1.3 iNOS和Arginase-1 酶活性的测定 | 第34页 |
3.1.4 荧光定量PCR测定M1/M2极化相关因子的mRNA表达水平 | 第34-35页 |
3.1.5 Western blot检测极化相关分子蛋白表达水平的变化 | 第35页 |
3.1.6 细胞表面标记CD206表达水平的变化 | 第35-36页 |
3.1.7 弓形虫感染后JAK-STAT、Akt-mTOR信号通路的激活状态 | 第36页 |
3.2 结果 | 第36-39页 |
3.2.1 iNOS和Arginase-1 酶活性的测定 | 第36-37页 |
3.2.2 荧光定量PCR测定M1/M2极化相关因子的mRNA表达水平 | 第37页 |
3.2.3 Western blot检测极化相关分子蛋白表达水平的变化 | 第37-38页 |
3.2.4 细胞表面标记CD206表达水平的变化 | 第38-39页 |
3.2.5 弓形虫感染后JAK-STAT、Akt-mTOR信号通路的激活状态 | 第39页 |
3.3 讨论 | 第39-41页 |
第四章 巨噬细胞极化对弓形虫感染和增殖的影响 | 第41-44页 |
4.1 材料和方法 | 第41-42页 |
4.1.1 虫株和实验动物 | 第41页 |
4.1.2 主要试剂和仪器设备 | 第41页 |
4.1.3 巨噬细胞极化对弓形虫感染的影响 | 第41页 |
4.1.4 巨噬细胞极化对弓形虫增殖的影响 | 第41-42页 |
4.2 结果 | 第42-43页 |
4.2.1 巨噬细胞极化对弓形虫感染的影响 | 第42页 |
4.2.2 巨噬细胞极化对弓形虫增殖的影响 | 第42-43页 |
4.3 讨论 | 第43-44页 |
第五章 全文结论 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
作者简历 | 第52页 |